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Marek's disease virus has a unique phosphoprotein, pp38, which is suspected to play an important role in Marek's disease pathogenesis. The objective of the present study was to utilize a mutant virus lacking the pp38 gene (rMd5Δpp38) to better characterize the biological function of pp38. This work shows that the pp38 gene is necessary to establish cytolytic infection in B cells but not in feather follicle epithelium, to produce an adequate level of latently infected T cells, and to maintain the transformed status in vivo.

El concepto de patotipo en la enfermedad de Marek (MD) data probablemente de finales de los 1950s cuando se reconoció una forma más virulenta de enfermedad Benton y Cover, 1957). Las distinciones entre las diferentes cepas de virus de MD (MDV) fueron aún mayores al describirse el patotipo vv a principios de los ochenta y el vv+ en los noventa. La designación de patotipo refleja propiedades biológicas importantes que se correlacionan con la capacidad de romper la inmunidad maternal en el campo. A pesar de ello, los métodos de clasificación de los diferentes patotipos en varios laboratorios no han sido uniformes, lo cual ha impedido una comparación crítica de los resultados. El método utilizado en el Avian Disease and Oncology Laboratory (ADOL) se basa en la inducción de lesiones linfoproliferativas en pollos vacunados. Este método ha sido utilizado para clasificar más de 45 aislados y es la base para la clasificación actual de los patotipos de cepas de MDV. Las limitaciones de este método son varias: necesidad de un tipo específico de pollos (15x7 ab+), uso de un gran número de animales y de un método estadístico para comparar las respuestas lesionales con las de las cepas control JM/102W y Md5. Debido a estas limitaciones no ha sido y no es probablemente usado en otros laboratorios. La comparación en el patotipado puede ser mejorada mediante la comparación de aislados de campo con cepas prototipo como las JM/102W, Md5 y 648A (American Type Culture Collection) o sus equivalentes. Los datos pueden ser generados mediante diferentes procedimientos in vivo que miden la inducción de tumores, enfermedad neurològica (por lesiones neoplásicas o no neoplásicas), o únicamente por criterios no neoplásicos (como el peso de los órganos linfoides o la replicación vírica). Los métodos basados en criterios neoplásicos, especialmente cuando son generados en pollos inmunizados de MD, probablemente se correlacionarán mejor con el método del ADOL y serán más relevantes en cuanto a la evolución de los virus de MD en el campo. En base a los datos de diferentes experimentos, se propone una modificación del método ADOL que utiliza menos animales y puede ser llevado a cabo en pollos SPF comerciales. El método modificado se basa en una comparación con el que mejor clasifica las cepas prototipo, y se espera que de resultados en general comparables con el método original. Otros criterios alternativos (ver abajo) también se evalúan como métodos primarios de patotipificación o como adjuntos a otros métodos de patotipificación. Se presentan las ventajas y desventajas de estos métodos alternativos., The concept of pathotype in Marek's disease (MD) probably dates from the recognition of a more virulent form of the disease in the late 1950s (Benton & Cover, 1957). Distinctions between MD virus strains were further expanded with the description of the vv pathotype in the early 1980s and of the vv + pathotype in the 1990s. Pathotype designations reflect important biological properties that correlate with the break-through of vaccinal immunity in the field. However, pathotyping methods applied by various laboratories have not been uniform, preventing critical comparison of results. Better uniformity of pathotyping procedures is desirable. The Avian Disease and Oncology Laboratory (ADOL) method is based on induction of lymphoproliferative lesions in vaccinated chickens. This method has been used to pathotype more than 45 isolates and is the basis for the current pathotype classification of MD virus strains. Its limitations include requirements for a specific type of chickens (15 x 7 ab+), large numbers of animals, and a statistical method to compare lesion responses to those of JM/102W and Md5 control strains. Because of these limitations, it has not been and is not likely to be used in other laboratories. Comparability in pathotyping can be improved by the comparison of field isolates with standard prototype strains such as JM/102W, Md5 and 648A (American Type Culture Collection) or their equivalents. Data may be generated by different in vivo procedures that measure tumour induction, neurological disease (both neoplastic and non-neoplastic lesions), or solely non-neoplastic criteria (such as lymphoid organ weights or virus replication). Methods based on neoplastic criteria, especially when generated in MD-immunized chickens, will probably correlate most closely with that of the ADOL method and be most relevant to evolution of MD virus in the field. Based on data from several trials, a modification of the ADOL method that utilizes fewer chickens and can be conducted with commercial specific pathogen free strains is proposed. The modified method is based on "best fit" comparisons with prototype strains, and is expected to provide results generally comparable with the original method. A variety of other alternative criteria (see earlier) are also evaluated both for primary pathotyping and as adjuncts to other pathotyping methods. Advantages and disadvantages of alternative methods are presented., Facultad de Ciencias Veterinarias