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Membrangebundene Zelladhäsionsmoleküle (CAMs) stellen Schlüsselkomponenten bei der Entstehung exzitatorischer Synapsen im ZNS dar. Bislang war wenig zu deren Rolle bei der Entstehung inhibitorischer Synapsen bekannt. Insbesondere der funktionelle Zusammenhang zwischen CAMs und der Clusterbildung des postsynaptischen Gerüstproteins Gephyrin, das die Akkumulation von GABAA-Rezeptoren an inhibitorischen Postsynapsen steuert, muss noch aufgeklärt werden. Neurofascin gehört zur L1-Unterfamilie der Immunglobulin-ähnlichen CAMs (IgCAMs). In vivo wurde gezeigt, dass es die Entstehung und Lokalisation von GABAergem Input an zerebellären Purkinje-Neuronen reguliert. Neurofascin stellt deshalb ein aussichtsvolles Kandidatenmolekül für die Rekrutierung von Gephyrin an inhibitorische Postsynapsen dar. Zu frühen Entwicklungszeitpunkten korrelierten die Bildung von Gephyrinclustern und ihre Translokation an den Axonhügel mit der Expression von Neurofascin auf dem Soma und Axoninitialsegment (AIS) dissoziierter hippokampaler Neurone. Des Weiteren wurde zu frühen Zeitpunkten der Synaptogenese hauptsächlich eine Neurofascin-Isoform exprimiert, der die fünfte Fibronektin-III ähnliche Domäne fehlt (NF-5te FN-III). Im Gegensatz dazu wurde die Isoform NF+5te FN-III erst im adulten Rattengehirn exprimiert. Die Transfektion von Expressionsvektoren unterschiedlicher Neurofascin-Isoformen bzw. Deletionsmutanten ergab, dass die embyronale Isoform NF-5te FN-III notwendig für die Gephyrinclusterbildung ist. Dieser Prozess scheint von extrazellulären Interaktionspartnern auf prä;- bzw. postsynaptischen Komponenten abhängig zu sein. Gegenwärtig ist die Identität eines Neurofascin-Interaktionspartners jedoch unbekannt. Punktmutationen in der zytoplasmatischen Domäne Neurofascins deuten darauf hin, dass dieses durch Aktivierung intrazellulärer Signalkaskaden die Clusterbildung von Gephyrin induziert. Mittels shRNA-vermitteltem Knockdown wurde gezeigt, dass Neurofascin notwendig für die Translokation von Gephyrin an den Axonhügel hippokampaler Neurone ist. Überdies ist Neurofascin sogar hinreichend für die funktionelle Wiederherstellung anomal lokalisierter Gephyrincluster nach Neurofascin-Knockdown. Die Expression von NF-5te FN-III resultierte in einer Akkumulation exogen exprimierten GFP-Gephyrins. Dies deutet auf einen funktionellen Zusammenhang zwischen Neurofascin und Gephyrin hin. Kolokalisationsstudien in HEK293- bzw. PC12E2-Zellen lieferten jedoch keinen Hinweis für eine direkte Neurofascin-Gephyrin-Interaktion, die zu den beobachteten Effekten führt. Membrane-bound cell adhesion molecules (CAMs) were discovered to be key players in initiating excitatory synapse formation in the CNS. However, so far little is known about the role of CAMs in inhibitory synapse development. In particular, a functional link between CAMs and the clustering of postsynaptic scaffold component gephyrin, which is a critical determinant of y-aminobutyric acid A (GABAA) clustering, still needs to be elaborated. Neurofascin belongs to the L1-subgroup of the immunoglobuline like CAMs (IgCAMs). In vivo Neurofascin has been shown to direct the formation and localization of GABAergic Input on cerebellar Purkinje neurons. Thus it serves as a candidate molecule recruiting gephyrin to inhibitory postsynaptic sites. At early stages of inhibitory synaptogenesis, formation of gephyrin clusters and their translocation to the axon hillock correlated with a somatic expression of neurofascin in rat hippocampal neurons. Furthermore, a neurofascin splice variant lacking the extracellular fifth fibronectine-III like domain (NF-5te FN-III) was predominantely expressed at early stages of synapse formation. In contrast expression of NF+5te FN-III harbouring the fifth fibronectine-III like domain was prominent only in adult brain. Transfection of expression vectors for different splice variants and deletion mutants of neurofascin revealed that the embryonic neurofascin isoform NF-5te FN-III is required for the formation of gephyrin clusters. This process is presumably dependent on extracellular interactions with molecules on pre- and postsynaptic terminals, respectively. However, possible interaction partners for neurofascin are unknown. Point mutations in the cytoplasmatic domain of neurofascin inhibited the formation of gephyrin clusters suggesting intracellular signal transduction pathways triggered by neurofascin. Furthermore, expression of neurofascin is necessary for the translocation of gephyrin clusters to the axon hillock of hippocampal neurons as shown by shRNA-mediated knockdown. In addition, overexpression of an embryonic neurofascin isoform was sufficient for functional rescue after knockdown of endogenous neurofascin. Expression of NF-5te FN-III resulted in the accumulation of exogenous GFP-Gephyrin at the axon initial segment AIS suggesting a functional link between neurofascin and gephyrin. However, colocalization studies in HEK293 and PC12E2 cells, respectively, did not provide an indication of direct neurofascin gephyrin interactions leading to the observed effects.