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The diagnosis of implant-associated infections is hampered due to microbial adherence and biofilm formation on the implant surface. Sonication of explanted devices was shown to improve the microbiological diagnosis by physical removal of biofilms. Recently, chemical agents have been investigated for biofilm dislodgement such as the chelating agent ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) and the reducing agent dithiothreitol (DTT). We compared the activity of chemical methods for biofilm dislodgement to sonication in an established in vitro model of artificial biofilm. Biofilm-producing laboratory strains of Staphylococcus epidermidis (ATCC 35984), S. aureus (ATCC 43300), E. coli (ATCC 25922) and Pseudomonas aeruginosa (ATCC 53278) were used. After 3 days of biofilm formation, porous glass beads were exposed to control (0.9% NaCl), sonication or chemical agents. Quantitative and qualitative biofilm analyses were performed by colony counting, isothermal microcalorimetry and scanning electron microscopy. Recovered colony counts after treatment with EDTA and DTT were similar to those after exposure to 0.9% NaCl for biofilms of S. epidermidis (6.3 and 6.1 vs. 6.0 log10 CFU/mL, S. aureus (6.4 and 6.3 vs. 6.3 log10 CFU/mL), E. coli (5.2 and 5.1 vs. 5.1 log10 CFU/mL and P. aeruginosa (5.1 and 5.2 vs. 5.0 log10 CFU/mL, respectively). In contrast, with sonication higher CFU counts were detected with all tested microorganisms (7.5, 7.3, 6.2 and 6.5 log10 CFU/mL, respectively) (p

The increasing use of medical indwelling devices has triggered the development of difficult-to-treat infections due to biofilm formation on the implant surface. Nowadays, infection treatment consists of invasive surgical intervention combined with long-course systemic antimicrobial infusion. However, treatment failure due to ineffective surgical debridement and inappropriate antibiotic therapy is a troublesome reality. Hence, the development and formulation of novel smart biomaterials as scaffolds for the local release of drugs gained increasing interest. The aim of this work was to investigate the anti-biofilm and anti-persister activity of selected antimicrobials, to fine-tune the isothermal microcalorimetry (IMC) as antimicrobial susceptibility method and to study the formulation, release characteristics and antimicrobial activity of different biomaterials (including recently developed hydrogels) loaded with therapeutically relevant antimicrobials for the management of orthopedic implant-associated infections. Results showed that high concentrations of vancomycin enriched a Staphylococcus aureus biofilm in persister cells, which are mainly responsible for infection recalcitrance. It was reported that a deep analysis of IMC data enables the detection and identification in real-time of persister cells, proving the suitability of this method for the characterization of new anti-persister compounds and biomaterials. Interestingly, the combined use of the glycopeptide with daptomycin proved highly bactericidal against persisters. The lipopeptide was then successfully loaded into soft and fully degradable thermosensitive hydrogels, which released high concentrations of active drug (widely exceeding the minimum bactericidal concentration) in a controlled manner against S. aureus for at least 15 days. Similarly, high titers of bacteriophages were released from smart thermoresponsive hydrogels in a controlled manner for at least 7 days. As a comparison, also the gentamicin elution profile from bone graft substitutes was investigated, revealing a timely burst release of bactericidal concentrations. This work demonstrated that high doses of commonly used antibiotics may select for persister cells in biofilms. In fact, recalcitrance and extreme resistance of biofilm-associated infections affecting the musculoskeletal system are deeply influenced by metabolically inactive cells that, to the best of our knowledge, were here identified and characterized for the first time using IMC. Smart bioscaffolds may serve as drug reservoirs and offer optimal conditions for the release of high doses of anti-biofilm and anti-persister molecules in situ, providing relevant progress to the fast-growing field of biomaterials and advances towards their clinical application., Die zunehmende Verwendung von medizinischen Verweilvorrichtungen hat die Entwicklung von schwer zu behandelnden Infektionen durch Biofilmbildung auf den Oberflächen von Implantaten bestimmt. Heutzutage besteht die Behandlung von Infektionen in einer Kombination aus operativen Eingriffen und systemischen antimikrobiellen Infusionen. Behandlungsversagen aufgrund ineffizienten chirurgischen Debridements und unpasssende antibiotische Therapie sind jedoch eine problematische Realität. Daher hat die Entwicklung und Formulierung neuartiger intelligenter Biomaterialien als Gerüst für die lokale Freisetzung von Arzneimitteln zunehmendes Interesse gefunden. Das Ziel dieser Arbeit war die Untersuchung der Anti-Biofilm- und Anti-Persister-Aktivität ausgewählter antimikrobieller Mittel, die Feinabstimmung der isothermen Mikrokalorimetrie (IMC) als antimikrobielle Suszeptibilitätsmethode und die Untersuchung antimikrobieller Potenziale diverser Biomaterialien, die mit therapeutisch relevanten Mitteln zur Behandlung von orthopädischen implantatassoziierten Infektionen beladen sind. Die Ergebnisse zeigten, dass hohe Konzentrationen von Vancomycin einen Staphylococcus aureus-Biofilm in Persisterzellen angereichert haben, die hauptsächlich für die Problemhaftigkeit der Infektionen verantwortlich sind. Eine gründliche Analyse von Daten der isothermen Mikrokalorimetrie (IMC) ermöglicht den Nachweis und die Identifizierung von persistenten Zellen in Echtzeit, was die Eignung dieser Methode für die Charakterisierung neuer anti-persistenter Verbindungen und Biomaterialien belegt. Interessanterweise erwies sich die kombinierte Verwendung des Glycopeptids mit Daptomycin als stark bakterizid gegen Persister. Das Lipopeptid wurde erfolgreich in vollständig abbaubare wärmeempfindliche Hydrogele geladen, die nachweislich auf kontrollierte Weise hohe Konzentrationen an Wirkstoff freisetzen, die die minimale bakterizide Konzentration gegen S. aureus für mindestens 15 Tage weit überschreiten. In ähnlicher Weise wurden hohe Titer von Bakteriophagen mindestens 7 Tage lang kontrolliert aus intelligenten thermoresponsiven Hydrogelen freigesetzt. Zum Vergleich wurde auch das Gentamicin-Elutionsprofil von Knochentransplantatersatzmitteln untersucht, was eine zeitnahe Freisetzung bakterizider Konzentrationen aufzeigt. Diese Arbeit zeigte, dass häufig verwendete Antibiotika in hohen Dosen persistente Zellen in Biofilmen selektieren können. Tatsächlich werden Rekalzitranz und extreme Resistenz von Biofilm- assoziierten Infektionen im Bewegungsapparat stark durch metabolisch inaktive Zellen beeinflusst, die hier zum ersten Mal mit IMC identifiziert und charakterisiert wurden. Intelligente Bioscaffolds können als Reservoir für Arzneimittel dienen und bieten optimale Bedingungen für die Freisetzung hoher Dosen von Biofilm- und Anti-Persister-Molekülen in situ, was dem schnell wachsenden Biomaterialbereich und der klinischen Anwendung wichtige Fortschritte bringt.