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44 results on '"Morille, Marie"'

11. Rapid communication: insights into the role of extracellular vesicles during Auger radioimmunotherapy.

Author

Karam, Jihad, Constanzo, Julie, Pichard, Alexandre, Gros, Laurent, Chopineau, Joël, Morille, Marie, and Pouget, Jean-Pierre

Subjects
EXTRACELLULAR vesicles, RADIATION-induced bystander effect, RADIOIMMUNOTHERAPY, AUGERS, TUMOR growth
Abstract

Non-targeted effects, including bystander and systemic effects, play a crucial role during Auger targeted radionuclide therapy. Here, we investigated whether small extracellular vesicles (sEVs) produced by irradiated cells could contribute to the bystander cytotoxic effects in vitro and also to therapeutic efficacy in vivo, after their injection in tumor xenografts. B16F10 melanoma donor cells were exposed to radiolabeled antibodies (Auger radioimmunotherapy, RIT) for 48 h or to X-rays (donor cells). Then, donor cells were incubated with fresh medium for 2 h to prepare conditioned medium (CM) that was transferred onto recipient cells for bystander effect assessment, or used for sEVs enrichment. Resulting sEVs were incubated in vitro with recipient cells for determining bystander cytotoxicity, or injected in B16F10 melanoma tumors harbored by athymic and C57BL/6 mice. In vitro analysis of bystander cytotoxic effects showed that CM killed about 30–40% of melanoma cells. SEVs isolated from CM contributed to this effect. Moreover, the double-stranded DNA (dsDNA) content was increased in sEVs isolated from CM of exposed cells compared to control (not exposed), but the difference was significant only for the X-ray condition. These results were supported by immunodetection of cytosolic dsDNA in donor cells, a phenomenon that should precede dsDNA enrichment in sEVs. However, sEVs cytotoxicity could not be detected in vivo. Indeed, in athymic and in immunocompetent mice that received four intratumoral injections of sEVs (1/day), tumor growth was not delayed compared with untreated controls. Tumor growth was slightly (not significantly) delayed in immunocompetent mice treated with sEVs from X-ray-exposed cells, and significantly with sEVs purified from CM collected after 48 h of incubation. These results highlight the need to determine the optimal conditions, including radiation absorbed dose and sEVs collection time, to obtain the strongest cytotoxic effects. This study demonstrates that sEVs could play a role during Auger RIT through bystander effects in vitro. No systemic effects were observed in vivo, under our experimental conditions. However, X-rays experiments showed that sEVs collection time might be influencing the nature of sEVs, a parameter that should also be investigated during Auger RIT. [ABSTRACT FROM AUTHOR]

Published
2023
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12. Development of extracellular vesicle-based medicinal products: A position paper of the group “Extracellular Vesicle translatiOn to clinicaL perspectiVEs – EVOLVE France”

Author

Silva, Amanda K.A., primary, Morille, Marie, additional, Piffoux, Max, additional, Arumugam, Surendar, additional, Mauduit, Phlippe, additional, Larghero, Jérôme, additional, Bianchi, Arnaud, additional, Aubertin, Kelly, additional, Blanc-Brude, Olivier, additional, Noël, Danièle, additional, Velot, Emilie, additional, Ravel, Célia, additional, Elie-Caille, Céline, additional, Sebbagh, Anna, additional, Boulanger, Chantal, additional, Wilhelm, Claire, additional, Rahmi, Gabriel, additional, Raymond-Letron, Isabelle, additional, Cherukula, Kondareddy, additional, Montier, Tristan, additional, Martinaud, Christophe, additional, Bach, Jean-Marie, additional, Favre-Bulle, Olivier, additional, Spadavecchia, Jolanda, additional, Jorgensen, Christian, additional, Menasché, Philippe, additional, Aussel, Clotilde, additional, Chopineau, Joël, additional, Mosser, Mathilde, additional, Ullah, Matti, additional, Sailliet, Nicolas, additional, Luciani, Nathalie, additional, Mathieu, Noëlle, additional, Rautou, Pierre-Emmanuel, additional, Brouard, Sophie, additional, Boireau, Wilfrid, additional, Jauliac, Sébastien, additional, Dedier, Marianne, additional, Trouvin, Jean-Hugues, additional, Gazeau, Florence, additional, Trouillas, Marina, additional, Peltzer, Juliette, additional, Monsel, Antoine, additional, and Banzet, Sébastien, additional

Published
2021
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22. Exosomal melanotransferrin as a potential biomarker for metastatic melanoma

Author

Bonhoure, Anne, Henry, Laurent, Morille, Marie, Aissaoui, Nesrine, Bellot, Gaëtan, Stoebner, Pierre-Emmanuel, Vidal, Michel, Dynamique des interactions membranaires normales et pathologiques (DIMNP), and Université Montpellier 1 (UM1)-Université Montpellier 2 - Sciences et Techniques (UM2)-Université de Montpellier (UM)-Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS)

Subjects
[SDV.BC]Life Sciences [q-bio]/Cellular Biology, ComputingMilieux_MISCELLANEOUS
Abstract

International audience

Published
2020

33. DNA nanocarriers for systemic administration: characterization and in vivo bioimaging in healthy mice

Author

David, Stephanie, Passirani, Catherine, Benoit, Jean-Pierre, Carmoy, Nathalie, Morille, Marie, Mevel, Mathieu, Chatin, Benoit, Montier, Tristan, Pitard, Bruno, Lemaire, Laurent, Micro et Nanomédecines Biomimétiques (MINT), Université d'Angers (UA)-Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale (INSERM)-Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS)-Université Bretagne Loire (UBL), Unité de recherche de l'institut du thorax (ITX-lab), Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale (INSERM)-Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS)-Université de Nantes - UFR de Médecine et des Techniques Médicales (UFR MEDECINE), Université de Nantes (UN)-Université de Nantes (UN), Génétique, génomique fonctionnelle et biotechnologies (UMR 1078) (GGB), EFS-Université de Brest (UBO)-Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale (INSERM)-Institut Brestois Santé Agro Matière (IBSAM), Université de Brest (UBO), IBISA ' SynNanoVect ' platform, Université de Brest (UBO)-IFR148 ScInBioS, DUMG, In Cell Art, and This work was supported by special grants from the 'Association Française contre les Myopathies' (Evry, France), 'Vaincre la Mucoviscidose' (Paris, France), 'Région Pays de la Loire' (CIMATH), 'Biogenouest', 'Région Bretagne', 'Ligue contre le cancer 29', and the 'Canceropole Grand Ouest'.

Subjects
[SDV.MHEP.ME] Life Sciences [q-bio]/Human health and pathology/Emerging diseases, [SDV.MHEP.ME]Life Sciences [q-bio]/Human health and pathology/Emerging diseases, lipid nanocapsules, ABC phenomenon, repeated administration, multimodular systems, targeting
Abstract

International audience; We hereby present different DNA nanocarriers consisting of new multimodular systems (MMS), containing the cationic lipid dioleylaminesuccinylparomomycin (DNA MMS DOSP), or bis (guanidinium)-tren-cholesterol (DNA MMS BGTC), and DNA lipid nanocapsules (DNA LNCs). Active targeting of the asialoglycoprotein receptor (ASGP-R) using galactose as a ligand for DNA MMS (GAL DNA MMS) and passive targeting using a polyethylene glycol coating for DNA LNCs (PEG DNA LNCs) should improve the properties of these DNA nanocarriers. All systems were characterized via physicochemical methods and the DNA payload of DNA LNCs was quantified for the first time. Afterwards, their biodistribution in healthy mice was analyzed after encapsulation of a fluorescent dye via in vivo biofluorescence imaging (BFI), revealing various distribution profiles depending on the cationic lipid used and their surface characteristics. Furthermore, the two vectors with the best prolonged circulation profile were administered twice in healthy mice revealing that the new DNA MMS DOSP vectors showed no toxicity and the same distribution profile for both injections, contrary to PEG DNA LNCs which showed a rapid clearance after the second injection, certainly due to the accelerated blood clearance phenomenon.Molecular Therapy - Nucleic Acids (2013) 2, e64; doi:10.1038/mtna.2012.56; published online 8 January 2013.

Published
2013

34. Microsphere compositions, preparation method and applications thereof

Author

Morille, Marie, Tran, Van-Thanh, Garric, Xavier, Coudane, Jean, Montero-Menei, Claudia, Venier-Julienne, Marie-Claire, Micro et Nanomédecines Biomimétiques (MINT), Université d'Angers (UA)-Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale (INSERM)-Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS)-Université Bretagne Loire (UBL), Institut des Biomolécules Max Mousseron [Pôle Chimie Balard] (IBMM), and Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS)-Institut de Chimie du CNRS (INC)-Université de Montpellier (UM)-Ecole Nationale Supérieure de Chimie de Montpellier (ENSCM)

Subjects
[SDV]Life Sciences [q-bio]
Abstract

A cell carrying microsphere composition, wherein the microsphere composition comprises a microspheric core comprising a triblock copolymer matrix A-B-A wherein A is selected from poly(lactide-co-glycolide) (PLGA) or polylactide (PLA) and B is poloxamer or poloxamine, wherein the microspheric core is coated with a cell adhesion coating and further comprises whole cells or cell fragments bonded to the cell adhesion coating, a process for the preparation of a cell carrying microsphere composition, and applications thereof.; Cette invention concerne une composition microsphérique transportant des cellules, ladite composition comprenant un noyau microsphérique contenant une matrice copolymère à trois séquences A-B-A, la séquence A étant choisie parmi le poly(lactide-co-glycolide) (PLGA) ou le polylactide (PLA), et la séquence B étant un poloxamère ou une poloxamine, le noyau microsphérique étant recouvert d'un enrobage d'adhésion cellulaire et comprenant par ailleurs des cellules entières ou des fragments cellulaires liés à l'enrobage d'adhésion cellulaire. L'invention concerne par ailleurs un procédé de préparation de la composition microsphérique transportant des cellules, et ses applications.

Published
2013

35. Development of pharmacologically active microcarriers transporting stem cells and releasing growth factors integrated in a thermosensitive injectable hydrogel for an efficient tissue engineering strategy

Author

Karam, Jean-Pierre, Morille, Marie, Bastiat, Guillaume, Noël, D., Venier-Julienne, Marie-Claire, Muscari, Claudio, Montero-Menei, Claudia, Ingénierie de la vectorisation particulaire, Université d'Angers (UA)-Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale (INSERM), Geriatric Research, Education and Clinical Center and Research Services, Bruce W. Carter Veterans Affairs Medical Center, Micro et Nanomédecines Biomimétiques (MINT), Université d'Angers (UA)-Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale (INSERM)-Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS)-Université Bretagne Loire (UBL), Service de Médecine Interne [CHU Rouen], CHU Rouen, Normandie Université (NU)-Normandie Université (NU)-Université de Rouen Normandie (UNIROUEN), and Normandie Université (NU)

Subjects
[SDV]Life Sciences [q-bio], ComputingMilieux_MISCELLANEOUS
Abstract

International audience

Published
2011

36. Systemic treatment of ferrocenyl-based drug loaded lipid nanocapsules on a subcutaneous 9L glioma model in rats

Author

Huynh, Ngoc Trinh, Passirani-Malleret, Catherine, Morille, Marie, Allard-Vannier, Emilie, Vessières, Anne, Jaouen, Gérard, Benoît, Jean-Pierre, Ingénierie de la vectorisation particulaire, Université d'Angers (UA)-Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale (INSERM), Micro et Nanomédecines Biomimétiques (MINT), Université d'Angers (UA)-Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale (INSERM)-Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS)-Université Bretagne Loire (UBL), Chimie et biochimie des complexes moléculaires (CBCM), Ecole Nationale Supérieure de Chimie de Paris - Chimie ParisTech-PSL (ENSCP), Université Paris sciences et lettres (PSL)-Université Paris sciences et lettres (PSL)-Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS), Chemical Biology (CHEMBIO), Institut Parisien de Chimie Moléculaire (IPCM), Université Pierre et Marie Curie - Paris 6 (UPMC)-Institut de Chimie du CNRS (INC)-Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS)-Université Pierre et Marie Curie - Paris 6 (UPMC)-Institut de Chimie du CNRS (INC)-Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS), Laboratoire Charles Friedel, and Université Paris sciences et lettres (PSL)-Université Paris sciences et lettres (PSL)-Institut de Chimie du CNRS (INC)-Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS)

Subjects
[SDV]Life Sciences [q-bio]
Published
2010

37. Thérapie génique à l'aide de nanocapsules lipidiques PEGylées

Author

Morille, Marie, Ingénierie de la vectorisation particulaire, Université d'Angers (UA)-Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale (INSERM), Université d'Angers, Catherine Passirani, and Plé, Anne-Marie

Subjects
effet EPR, tumor, systemic pathway, galactose, voie systémique, poly (éthylène glycol), EPR effect, [SDV.SP]Life Sciences [q-bio]/Pharmaceutical sciences, non-viral vector, [SDV.SP] Life Sciences [q-bio]/Pharmaceutical sciences, tumeur, transfection, hépatocytes, vecteur non-viral
Abstract

The main objective of gene therapy via a systemic pathway is the development of a stable and non-toxic gene vector that can encapsulate and deliver foreign genetic materials into specific cell types with the transfection efficiency of viral vectors. In this way, lipid nanocapsules loaded with DOTAP/DOPE lipoplexes, named DNA LNCs were used. These vectors were post-inserted by with long poly (ethylene glycol) (PEG) chains, thanks to two kinds of amphiphilic polymers: DSPEmPEG2000 and copolymer F108. A physico-chemical study of the surface modification was realized. The association of DSPE-mPEG2000 chains in a brush conformation allowed to obtain a stealth vector able to accumulate significantly in tumor tissues by EPR effect. In parallel, a model of extracellular targeting of asialoglycoprotein receptors over-expressed on hepatocytes was envisaged. The grafting of galactose residues at the extremity of F108 PEG chains allowed the specific expression of a transgene in rat primary hepatocytes., A ce jour, l'objectif principal de la thérapie génique par voie intraveineuse est le développement de vecteurs pouvant encapsuler et délivrer des acides nucléiques au niveau de cellules cibles, avec l'efficacité de transfection des vecteurs viraux. Dans ce but, des nanocapsules lipidiques chargées en lipoplexes de DOTAP/DOPE, les LNC ADN, ont été utilisées. Ainsi, ces vecteurs ont été post-insérés avec de longues chaînes de poly (éthylène glycol) (PEG), grâce à l'utilisation de deux types de polymères amphiphiles : le DSPE-mPEG2000 et le copolymère F108. Une étude physico-chimique de la modification de surface a été réalisée. La présence de chaînes de DSPE-mPEG2000 en configuration brosse, a permis l'obtention d'un vecteur furtif aux yeux du système immunitaire capable de s'accumuler de manière significative au niveau des tissus tumoraux, grâce à un effet EPR. En parallèle, un modèle de ciblage extracellulaire du récepteur aux asialoglycoprotéines des hépatocytes a été envisagé. Le greffage de résidus galactose à l'extrémité des chaînes de PEG du copolymère F108, a permis l'expression spécifique d'un transgène au niveau des hépatocytes primaires de rat.

Published
2009

41. Development of extracellular vesicle-based medicinal products: A position paper of the group 'Extracellular Vesicle translatiOn to clinicaL perspectiVEs – EVOLVE France'

Author

Emilie Velot, Marina Trouillas, Joël Chopineau, J. Peltzer, Sophie Brouard, Olivier Favre-Bulle, Jérôme Larghero, Tristan Montier, Amanda K. A. Silva, Florence Gazeau, Phlippe Mauduit, Jean-Hugues Trouvin, Arnaud Bianchi, Noëlle Mathieu, Christian Jorgensen, Matti Ullah, Kelly Aubertin, Philippe Menasché, Surendar Arumugam, Jolanda Spadavecchia, C. Aussel, Danièle Noël, Wilfrid Boireau, M. Dedier, Sébastien Jauliac, Sébastien Banzet, Jean-Marie Bach, Antoine Monsel, Max Piffoux, Kondareddy Cherukula, Marie Morille, Célia Ravel, Christophe Martinaud, Chantal M. Boulanger, Claire Wilhelm, Mathilde Mosser, Olivier Blanc-Brude, Nicolas Sailliet, Pierre-Emmanuel Rautou, Nathalie Luciani, Isabelle Raymond-Letron, Céline Elie-Caille, Gabriel Rahmi, Anna C. Sebbagh, Matière et Systèmes Complexes (MSC (UMR_7057)), Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS)-Université de Paris (UP), Institut Charles Gerhardt Montpellier - Institut de Chimie Moléculaire et des Matériaux de Montpellier (ICGM ICMMM), Ecole Nationale Supérieure de Chimie de Montpellier (ENSCM)-Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS)-Université de Montpellier (UM)-Université Montpellier 1 (UM1)-Université Montpellier 2 - Sciences et Techniques (UM2)-Institut de Chimie du CNRS (INC), Interactions cellules souches-niches : physiologie, tumeurs et réparation tissulaire, Service de Santé des Armées-Hôpital Paul Brousse-Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale (INSERM)-Université Paris-Saclay, Immunologie humaine, physiopathologie & immunothérapie (HIPI (UMR_S_976 / U976)), Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale (INSERM)-Université de Paris (UP), Ingénierie Moléculaire et Physiopathologie Articulaire (IMoPA), Université de Lorraine (UL)-Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS), Paris-Centre de Recherche Cardiovasculaire (PARCC (UMR_S 970/ U970)), Hôpital Européen Georges Pompidou [APHP] (HEGP), Assistance publique - Hôpitaux de Paris (AP-HP) (AP-HP)-Hôpitaux Universitaires Paris Ouest - Hôpitaux Universitaires Île de France Ouest (HUPO)-Assistance publique - Hôpitaux de Paris (AP-HP) (AP-HP)-Hôpitaux Universitaires Paris Ouest - Hôpitaux Universitaires Île de France Ouest (HUPO)-Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale (INSERM)-Université de Paris (UP), Cellules Souches, Plasticité Cellulaire, Médecine Régénératrice et Immunothérapies (IRMB), Université de Montpellier (UM)-Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale (INSERM)-Centre Hospitalier Régional Universitaire [Montpellier] (CHRU Montpellier), CHU Pontchaillou [Rennes], Institut de recherche en santé, environnement et travail (Irset), Université d'Angers (UA)-Université de Rennes 1 (UR1), Université de Rennes (UNIV-RENNES)-Université de Rennes (UNIV-RENNES)-École des Hautes Études en Santé Publique [EHESP] (EHESP)-Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale (INSERM)-Structure Fédérative de Recherche en Biologie et Santé de Rennes ( Biosit : Biologie - Santé - Innovation Technologique ), Franche-Comté Électronique Mécanique, Thermique et Optique - Sciences et Technologies (UMR 6174) (FEMTO-ST), Université de Technologie de Belfort-Montbeliard (UTBM)-Ecole Nationale Supérieure de Mécanique et des Microtechniques (ENSMM)-Université de Franche-Comté (UFC), Université Bourgogne Franche-Comté [COMUE] (UBFC)-Université Bourgogne Franche-Comté [COMUE] (UBFC)-Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS), Laboratoire Physico-Chimie Curie [Institut Curie] (PCC), Institut Curie [Paris]-Institut de Chimie du CNRS (INC)-Sorbonne Université (SU)-Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS), Assistance publique - Hôpitaux de Paris (AP-HP) (AP-HP)-Hôpitaux Universitaires Paris Ouest - Hôpitaux Universitaires Île de France Ouest (HUPO), STROMALab, Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS)-Ecole Nationale Vétérinaire de Toulouse (ENVT), Institut National Polytechnique (Toulouse) (Toulouse INP), Université Fédérale Toulouse Midi-Pyrénées-Université Fédérale Toulouse Midi-Pyrénées-Institut National Polytechnique (Toulouse) (Toulouse INP), Université Fédérale Toulouse Midi-Pyrénées-Université Fédérale Toulouse Midi-Pyrénées-Université Toulouse III - Paul Sabatier (UT3), Université Fédérale Toulouse Midi-Pyrénées-Etablissement Français du Sang-Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale (INSERM), Génétique, génomique fonctionnelle et biotechnologies (UMR 1078) (GGB), Institut Brestois Santé Agro Matière (IBSAM), Université de Brest (UBO)-Université de Brest (UBO)-EFS-Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale (INSERM), Immuno-Endocrinologie Cellulaire et Moléculaire, Institut National de la Recherche Agronomique (INRA)-Ecole Nationale Vétérinaire, Agroalimentaire et de l'alimentation Nantes-Atlantique (ONIRIS), Chimie, Structures et Propriétés de Biomatériaux et d'Agents Thérapeutiques (CSPBAT), Institut de Chimie du CNRS (INC)-Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS)-Université Sorbonne Paris Nord, Centre de Recherche en Transplantation et Immunologie (U1064 Inserm - CRTI), Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale (INSERM)-Université de Nantes - UFR de Médecine et des Techniques Médicales (UFR MEDECINE), Université de Nantes (UN)-Université de Nantes (UN), Institut de Radioprotection et de Sûreté Nucléaire (IRSN), Centre de recherche sur l'Inflammation (CRI (UMR_S_1149 / ERL_8252 / U1149)), Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale (INSERM)-Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS)-Université de Paris (UP), Université de Paris (UP), Immunologie - Immunopathologie - Immunothérapie [CHU Pitié Salpêtrière] (I3), CHU Charles Foix [AP-HP], Assistance publique - Hôpitaux de Paris (AP-HP) (AP-HP)-Sorbonne Université (SU)-Assistance publique - Hôpitaux de Paris (AP-HP) (AP-HP)-Sorbonne Université (SU)-Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale (INSERM)-CHU Pitié-Salpêtrière [AP-HP], Assistance publique - Hôpitaux de Paris (AP-HP) (AP-HP)-Sorbonne Université (SU), This research did not receive any specific grant from funding agencies in the public, commercial, or not-for-profit sectors., Morille, Marie, Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS)-Université Paris Cité (UPCité), Institut Charles Gerhardt Montpellier - Institut de Chimie Moléculaire et des Matériaux de Montpellier (ICGM), Ecole Nationale Supérieure de Chimie de Montpellier (ENSCM)-Institut de Chimie du CNRS (INC)-Université de Montpellier (UM)-Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS), Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale (INSERM)-Université Paris Cité (UPCité), Assistance publique - Hôpitaux de Paris (AP-HP) (AP-HP)-Hôpitaux Universitaires Paris Ouest - Hôpitaux Universitaires Île de France Ouest (HUPO)-Assistance publique - Hôpitaux de Paris (AP-HP) (AP-HP)-Hôpitaux Universitaires Paris Ouest - Hôpitaux Universitaires Île de France Ouest (HUPO)-Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale (INSERM)-Université Paris Cité (UPCité), Centre Hospitalier Régional Universitaire [Montpellier] (CHRU Montpellier)-Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale (INSERM)-Université de Montpellier (UM), Université d'Angers (UA)-Université de Rennes (UR)-École des Hautes Études en Santé Publique [EHESP] (EHESP)-Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale (INSERM)-Structure Fédérative de Recherche en Biologie et Santé de Rennes ( Biosit : Biologie - Santé - Innovation Technologique ), Université de Technologie de Belfort-Montbeliard (UTBM)-Ecole Nationale Supérieure de Mécanique et des Microtechniques (ENSMM)-Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS)-Université de Franche-Comté (UFC), Université Bourgogne Franche-Comté [COMUE] (UBFC)-Université Bourgogne Franche-Comté [COMUE] (UBFC), Université Toulouse III - Paul Sabatier (UT3), Université Fédérale Toulouse Midi-Pyrénées-Université Fédérale Toulouse Midi-Pyrénées-Ecole Nationale Vétérinaire de Toulouse (ENVT), Université Fédérale Toulouse Midi-Pyrénées-Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale (INSERM)-Etablissement Français du Sang-Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS), EFS-Université de Brest (UBO)-Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale (INSERM)-Institut Brestois Santé Agro Matière (IBSAM), Université de Brest (UBO), Institut National de la Recherche Agronomique (INRA)-École nationale vétérinaire, agroalimentaire et de l'alimentation Nantes-Atlantique (ONIRIS), Laboratoire de Radiobiologie des expositions médicales (IRSN/PSE-SANTE/SERAMED/LRMed), Service de recherche en radiobiologie et en médecine régénérative (IRSN/PSE-SANTE/SERAMED), Institut de Radioprotection et de Sûreté Nucléaire (IRSN)-Institut de Radioprotection et de Sûreté Nucléaire (IRSN), Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale (INSERM)-Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS)-Université Paris Cité (UPCité), Université Paris Cité (UPCité), Assistance publique - Hôpitaux de Paris (AP-HP) (AP-HP)-Sorbonne Université (SU)-Sorbonne Université (SU), Laboratoire MSC Matière et Systèmes Complexes, Université de Paris, CNRS UMR 7057, 75006 Paris, France., Matière et Systèmes Complexes (MSC), Université de Toulouse (UT)-Université de Toulouse (UT)-Ecole Nationale Vétérinaire de Toulouse (ENVT), Université de Toulouse (UT)-Université de Toulouse (UT)-Institut National Polytechnique (Toulouse) (Toulouse INP), Université de Toulouse (UT)-Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale (INSERM)-Etablissement Français du Sang-Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS), Université de Paris - UFR Médecine [Santé] (UP Médecine), Institut de Chimie du CNRS (INC)-Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS)-Université de Montpellier (UM)-Ecole Nationale Supérieure de Chimie de Montpellier (ENSCM), Université de Montpellier (UM), Centre Léon Bérard [Lyon], Hôpital Paul Brousse, Hopital Saint-Louis [AP-HP] (AP-HP), Assistance publique - Hôpitaux de Paris (AP-HP) (AP-HP), CIC - Biotherapie - Saint Louis ((CIC-BT 301)), Assistance publique - Hôpitaux de Paris (AP-HP) (AP-HP)-Université Paris Diderot - Paris 7 (UPD7)-Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale (INSERM)-Groupe Hospitalier Saint Louis - Lariboisière - Fernand Widal [Paris], Laboratoire d'HistoPathologie Expérimentale et Comparée [Toulouse] (LabHPEC), SCIENCES BIOLOGIQUES ET FONCTIONNELLES, Ecole Nationale Vétérinaire de Toulouse (ENVT), Université Fédérale Toulouse Midi-Pyrénées-Université Fédérale Toulouse Midi-Pyrénées, Centre Hospitalier Régional Universitaire de Brest (CHRU Brest), Centre de Transfusion Sanguine des Armées (CTSA), Service de Santé des Armées, Immuno-Endocrinologie Cellulaire et Moléculaire (IECM), Université de Nantes (UN)-Ecole Nationale Vétérinaire de Nantes-École nationale vétérinaire, agroalimentaire et de l'alimentation Nantes-Atlantique (ONIRIS)-Institut National de Recherche pour l’Agriculture, l’Alimentation et l’Environnement (INRAE), École nationale vétérinaire, agroalimentaire et de l'alimentation Nantes-Atlantique (ONIRIS), Institut de Recherche Biomédicale des Armées (IRBA), Centre hospitalier universitaire de Nantes (CHU Nantes), Centre de Recherche en Transplantation et Immunologie - Center for Research in Transplantation and Translational Immunology (U1064 Inserm - CR2TI), Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale (INSERM)-Nantes Université - UFR de Médecine et des Techniques Médicales (Nantes Univ - UFR MEDECINE), Nantes Université - pôle Santé, Nantes Université (Nantes Univ)-Nantes Université (Nantes Univ)-Nantes Université - pôle Santé, Nantes Université (Nantes Univ)-Nantes Université (Nantes Univ), Institut de transplantation urologie-néphrologie (ITUN), Université de Nantes (UN)-Centre hospitalier universitaire de Nantes (CHU Nantes), Hôpital Beaujon [AP-HP], Centre de référence des Maladies Vasculaires du Foie [Paris] (FILFOIE), Institut de Recherche Saint-Louis - Hématologie Immunologie Oncologie (Département de recherche de l’UFR de médecine, ex- Institut Universitaire Hématologie-IUH) (IRSL), and CHU Pitié-Salpêtrière [AP-HP]

Subjects
Quality Control, Knowledge management, [SDV.BIO]Life Sciences [q-bio]/Biotechnology, Biological medicinal products, media_common.quotation_subject, Drug Compounding, [SDV]Life Sciences [q-bio], Regulatory requirements, Pharmaceutical Science, Marketing authorization, Exosomes, Chemistry Techniques, Analytical, 03 medical and health sciences, Extracellular Vesicles, 0302 clinical medicine, Drug Development, Drug Stability, [CHIM]Chemical Sciences, Humans, Quality (business), ComputingMilieux_MISCELLANEOUS, 030304 developmental biology, media_common, Cell-free therapy, Secretome, 0303 health sciences, Clinical Trials as Topic, Clinical-grade EV, Scientific progress, business.industry, Drug Administration Routes, Extracellular vesicle, Drugs, Investigational, Regulatory affairs, 3. Good health, [SDV.BIO] Life Sciences [q-bio]/Biotechnology, Clinical trial, Europe, Analytics, 030220 oncology & carcinogenesis, Position paper, Medicinal products, Business, Microvesicles
Abstract

International audience; Extracellular vesicles (EV) are emergent therapeutic effectors that have reached clinical trial investigation. To translate EV-based therapeutic to clinic, the challenge is to demonstrate quality, safety, and efficacy, as required for any medicinal product. EV research translation into medicinal products is an exciting and challenging perspective. Recent papers, provide important guidance on regulatory aspects of pharmaceutical development, defining EVs for therapeutic applications and critical considerations for the development of potency tests. In addition, the ISEV Task Force on Regulatory Affairs and Clinical Use of EV-based Therapeutics as well as the Exosomes Committee from the ISCT are expected to contribute in an active way to the development of EV-based medicinal products by providing update on the scientific progress in EVs field, information to patients and expert resource network for regulatory bodies. The contribution of our work group "Extracellular Vesicle translatiOn to clinicaL perspectiVEs - EVOLVE France", created in 2020, can be positioned in complement to all these important initiatives. Based on complementary scientific, technical, and medical expertise, we provide EV-specific recommendations for manufacturing, quality control, analytics, non-clinical development, and clinical trials, according to current European legislation. We especially focus on early phase clinical trials concerning immediate needs in the field. The main contents of the investigational medicinal product dossier, marketing authorization applications, and critical guideline information are outlined for the transition from research to clinical development and ultimate market authorization.

Published
2021

42. Nanotechnologies for Intracellular Protein Delivery: Recent Progress in Inorganic and Organic Nanocarriers

Author

Anne Aubert-Pouëssel, Khaled Elhady Mohamed, Joël Chopineau, Laurence Guglielmi, Lyria Ouchait, Jean-Marie Devoisselle, Pierre Martineau, Sarah Le Saux, Marie Morille, Philippe Legrand, Morille, Marie, Institut Charles Gerhardt Montpellier - Institut de Chimie Moléculaire et des Matériaux de Montpellier (ICGM), Ecole Nationale Supérieure de Chimie de Montpellier (ENSCM)-Institut de Chimie du CNRS (INC)-Université de Montpellier (UM)-Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS), Institut de Recherche en Cancérologie de Montpellier (IRCM - U1194 Inserm - UM), CRLCC Val d'Aurelle - Paul Lamarque-Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale (INSERM)-Université de Montpellier (UM), Institut Charles Gerhardt Montpellier - Institut de Chimie Moléculaire et des Matériaux de Montpellier (ICGM ICMMM), and Ecole Nationale Supérieure de Chimie de Montpellier (ENSCM)-Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS)-Université de Montpellier (UM)-Université Montpellier 1 (UM1)-Université Montpellier 2 - Sciences et Techniques (UM2)-Institut de Chimie du CNRS (INC)

Subjects
[SDV.BIO]Life Sciences [q-bio]/Biotechnology, medicine.drug_class, Endosome, Pharmaceutical Science, Medicine (miscellaneous), 02 engineering and technology, 010402 general chemistry, Monoclonal antibody, [SDV.SP.PG] Life Sciences [q-bio]/Pharmaceutical sciences/Galenic pharmacology, 01 natural sciences, Genome editing, Extracellular, medicine, Pharmacology (medical), ComputingMilieux_MISCELLANEOUS, Genetics (clinical), Pharmacology, Transcription activator-like effector nuclease, Chemistry, Biochemistry (medical), [SDV.SP]Life Sciences [q-bio]/Pharmaceutical sciences, 021001 nanoscience & nanotechnology, 3. Good health, 0104 chemical sciences, Cell biology, [SDV.BIO] Life Sciences [q-bio]/Biotechnology, [SDV.SP.PG]Life Sciences [q-bio]/Pharmaceutical sciences/Galenic pharmacology, Cytoplasm, Nanocarriers, 0210 nano-technology, Intracellular
Abstract

International audience; From recombinant insulin to monoclonal antibodies, proteins have become essential drugs in the therapeutic arsenal and respond to a broad spectrum of diseases. While commercially available proteins have an extracellular activity, intracellular targets could be a powerful alternative to treat many pathologies such as cancers, immune disorders, but also infectious diseases. Nevertheless, to enter the cell and reach the target organelle or molecule, therapeutic proteins have to face numerous barriers (internalisation, endosomal escape, cytoplasm trafficking). In view of the fragile nature and high heterogeneity of proteins in term of size, charge and hydrophilic/lipophilic profile, the development of an efficient cytoplasm delivery system remains a long-standing challenge. The discovery of several gene editing tools (CRISPR-Cas9, TALEN, or other ZFP) has particularly boosted this research field in the last decade. Among delivery systems that can be used in vivo, some synthetic nanovectors offer interesting opportunities. In this review, we decided to describe the most recent progress in development of inorganic (silica, gold, phosphate, metal organic framework, carbon nanoparticles) as well as organic (polymer, lipid) nanoparticles both applied to intracellular protein delivery.

Published
2021

43. Near-Infrared Optical Imaging of Nucleic Acid Nanocarriers In Vivo.

Author

Rome C, Gravier J, Morille M, Divita G, Bolcato-Bellemin AL, Josserand V, and Coll JL

Subjects
Animals, Cell-Penetrating Peptides chemistry, Female, Gene Transfer Techniques, Genes, Reporter genetics, Intravital Microscopy methods, Luminescent Measurements methods, Mice, Mice, Nude, Microscopy, Fluorescence methods, RNA, Small Interfering genetics, Staining and Labeling methods, Fluorescence Resonance Energy Transfer methods, Fluorescent Dyes chemistry, Nanoparticles chemistry, Optical Imaging methods
Abstract

Noninvasive, real-time optical imaging methods are well suited to follow the in vivo distribution of nucleic acid nanocarriers, their dissociation and the resulting gene expression or inhibition. Indeed, most small animal imaging devices are performing bioluminescence and fluorescence measurements without moving the animal, allowing a simple, rapid, and cost-effective method of investigation of several parameters at a time, in longitudinal experiments that can last for days or weeks.Here we help the reader in choosing adapted near-infrared (NIR) fluorophores or pairs of fluorophores for FRET assays, imaging of reporter genes as well as nanocarriers for in vivo gene and siRNA delivery. In addition, we present the labeling methods of these macromolecules, and of their payload and the protocols to detect them using bioluminescence and NIR fluorescence imaging in mice.

Published
2019
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44. Near-infrared optical imaging of nucleic acid nanocarriers in vivo.

Author

Rome C, Gravier J, Morille M, Divita G, Bolcato-Bellemin AL, Josserand V, and Coll JL

Subjects
Animals, DNA administration & dosage, Drug Carriers chemistry, Drug Carriers pharmacokinetics, Female, Fluorescent Dyes chemistry, Lac Operon genetics, Liposomes, Luminescent Measurements, Mice, Phospholipids metabolism, RNA, Small Interfering administration & dosage, Water chemistry, DNA metabolism, Drug Carriers metabolism, Infrared Rays, Nanostructures, Optical Imaging methods, RNA, Small Interfering metabolism
Abstract

Noninvasive, real-time optical imaging methods are well suited to follow the in vivo distribution of nucleic acid nanocarriers, their dissociation, and the resulting gene expression or inhibition. Indeed, most small animal imaging devices perform bioluminescence and fluorescence measurements without moving the animal, allowing a simple, rapid, and cost-effective method of investigation of several parameters at a time, in longitudinal experiments that can last for days or weeks.Here we help the reader in choosing adapted near-infrared (NIR) fluorophores or pairs of fluorophores for Förster resonance energy transfer assays, imaging of reporter genes, as well as nanocarriers for in vivo gene and siRNA delivery. In addition, we present the labeling methods of these macromolecules and of their payload and the protocols to detect them using bioluminescence and NIR fluorescence imaging in mice.

Published
2013
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