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Während der vergangenen Jahre hat die Verwendung dezellularisierter Gewebeprothesen in der Medizin kontinuierlich zugenommen. Im Rahmen dieser Dissertationsarbeit wurden ausgewählte physikalische und prozedurale Methoden zur Dezellularisation (DZ) biologischer Gewebe systematisch untersucht und bewertet. 72 Aortenwände (AW) frischer Schweineherzen wurden dafür in drei verschiedenen Gruppen einer chemischen Dezellularisationslösung, bestehend aus je 0,5 % Sodiumdeoxycholat und Sodiumdodecylsulfat, für 4 h oder 8 h ausgesetzt. Die Inkubation fand entweder kontinuierlich oder in repetitiven Behandlungszyklen statt. Ein Zyklus bestand dabei aus je 2 h chemischer Behandlung gefolgt von einem 30 min Waschvorgang mit Natriumchlorid-Lösung (NaCl). Während der Prozeduren befanden sich die AW entweder in einem konventionellen Schüttel-Inkubator oder wurden einer zirkulären Strömungsbewegung im Sinne einer Flussdezellularisation ausgesetzt. Zusätzlich zur Flussdezellularisation wurde ein Teil der AW mit Ultraschallwellen behandelt. Nach Abschluss der DZ durchliefen alle AW zehn repetitive 15 min Waschschritte mit NaCl. Basierend auf der Annahme, dass erfolgreiche DZ gleichzusetzen ist mit der Abwesenheit von Zellkernen bei gleichzeitigem Erhalt intakter Extrazellulärmatrix (EZM), wurde die Auswertung der DZ Ergebnisse durchgeführt. Diese erfolgte mithilfe fluoreszenz-, licht-, und rasterelektronenmikroskopischer Aufnahmen der Proben. Die Effektivität der DZ wurde dabei anhand der zur Probenoberfläche erreichten Eindringtiefen (EDT) an DNA-Eradikation in Färbungen mit 4',6-diamidin-2-phenylindol (DAPI) und Hämatoxylin-Eosin bewertet. Zur Beurteilung der EZM dienten die Bindegewebsfärbungen Movat Pentachrom und Pikro-Siriusrot sowie die Rasterelektronenmikroskopie (REM). Generell waren die nach 4 h und 8 h eruierten EDT der äußeren Oberflächen der AW signifikant höher als die der lumenseitigen Oberflächen (64 ± 22%, p