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O abacaxi (Ananas comosus) é uma espécie hortícola da família Bromeliaceae de alto interesse socioeconômico, amplamente cultivada em todo o mundo. A multiplicação de mudas de abacaxi no campo pode ser demorada, exigindo um investimento significativo de mão-de-obra. O objetivo deste estudo foi avaliar o desempenho de sistemas de imersão contínua e temporária na ampliação da escala de micropropagação da espécie. As brotações foram obtidas de explantes sub-cultivados em frascos com meio de cultura gelificado e sem troca gasosa. Os brotos foram transferidos para meio líquido MS suplementado com 2mM ANA e 4mM BAP e cultivados em quatro diferentes dispositivos: frascos selados, frascos com membranas gasosas semipermeáveis, RITA® e frascos duplos. Após 45 dias de cultivo, foram analisados o crescimento das plantas, o incremento de massa fresca, a densidade estomática da superfície abaxial das folhas, o rendimento quântico máximo do fotossistema II e os teores de clorofila e carotenoides. Diferenças significativas foram observadas no crescimento das plantas, densidade estomática e teores de clorofila e carotenóides. Os frascos duplos e os dispositivos RITA® revelaram resultados superiores em parâmetros morfológicos, como crescimento vegetal e densidade estomática, enquanto os tratamentos em frascos selados e com membrana se destacaram no teor de clorofila., Pineapple (Ananas comosus) is a horticultural species of the Bromeliaceae family of high socioeconomic interest, widely cultivated around the world. The multiplication of pineapple seedlings in the field can be time-consuming, requiring a significant labor investment. The objective of this study was to evaluate the performance of continuous and temporary immersion systems in the micropropagation scale-up of the species. Shoots were obtained from explants subcultured in flasks with gelled culture medium and without gas exchange. The shoots were transferred to liquid MS medium supplemented with 2mM NAA, and 4mM BAP, and cultivated in four different devices: sealed flasks, flasks with semipermeable gas membranes, RITA®, and twin-flasks. After 45 days of cultivation, plant growth, fresh mass increment, the stomatal density of the abaxial surface of the leaves, the maximum quantum yield of the photosystem II, and contents of chlorophyll and carotenoids were analyzed. Significant differences were observed in plant growth, stomatal density, and contents of chlorophyll and carotenoids. The twin-flasks and RITA® devices revealed better results in morphological parameters, such as plant growth and stomatal density, while the treatments in sealed flasks and with membrane stood out in the chlorophyll content.

The aim of the study was to establish a DNA isolation protocol Nectandra megapotamica (Spreng.) Mez., able to obtain samples of high yield and quality for use in genomic analysis. A commercial kit and four classical methods of DNA extraction were tested, including three cetyltrimethylammonium bromide (CTAB)-based and one sodium dodecyl sulfate (SDS)-based methods. Three drying methods for leaves samples were also evaluated including drying at room temperature (RT), in an oven at 40ºC (S40), and in a microwave oven (FMO). The DNA solutions obtained from different types of leaves samples using the five protocols were assessed in terms of cost, execution time, and quality and yield of extracted DNA. The commercial kit did not extract DNA with sufficient quantity or quality for successful PCR reactions. Among the classic methods, only the protocols of Dellaporta and of Khanuja yielded DNA extractions for all three types of foliar samples that resulted in successful PCR reactions and subsequent enzyme restriction assays. Based on the evaluated variables, the most appropriate DNA extraction method for Nectandra megapotamica (Spreng.) Mez. was that of Dellaporta, regardless of the method used to dry the samples. The selected method has a relatively low cost and total execution time. Moreover, the quality and quantity of DNA extracted using this method was sufficient for DNA sequence amplification using PCR reactions and to get restriction fragments., O objetivo do estudo foi estabelecer um protocolo de isolamento de DNA de Nectandra megapotamica (Spreng.) Mez., capaz de obter amostras de alto rendimento e qualidade para emprego em análises genômicas. Foram testados um kit comercial e quatro métodos clássicos de extração de DNA, incluindo três métodos baseados em brometo de cetiltrimetilamónio (CTAB) e um baseado em dodecil sulfato de sódio (SDS). Três métodos de secagem de amostras de folhas foram também avaliados, incluindo a secagem à temperatura ambiente (RT), em estufa a 40ºC (S40), e em forno microondas (FMO). As soluções de DNA obtidas a partir de diferentes tipos de amostras foliares utilizando os cinco protocolos foram avaliadas em termos de custo, tempo de execução e qualidade e rendimento de DNA extraído. O kit comercial não extraiu DNA com quantidade ou qualidade suficiente para o sucesso das reações de PCR. Entre os métodos clássicos, apenas os protocolos Dellaporta e Khanuja proporcionaram extração de DNA para os três tipos de amostras foliares, que resultaram em reações de PCR e ensaios com enzimas de restrição bem sucedidos. Com base nas variáveis avaliadas, o método de extração de DNA mais apropriado para Nectandra megapotamica (Spreng.) Mez. foi o Dellaporta, independentemente do método utilizado para secar as amostras. O método selecionado apresenta custo e tempo de execução total relativamente baixo. Além disso, a qualidade e quantidade do DNA extraído utilizando o método foram suficientes para amplificação de fragmentos de DNA por meio de reações de PCR e para obter fragmentos de restrição.