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TSWV è presente in tutto il mondo ed infetta piante orticole e ornamentali, sia coltivate che spontanee: più di 1000 specie botaniche appartenenti a 15 famiglie di monocotiledoni e 69 famiglie di dicotiledoni. In Italia è stato individuato per la prima volta nel 1989 e da allora si sono succeduti decine e decine di casi in tutte le regioni italiane, coinvolgendo anche coltivazioni di specie officinali. Purtroppo, le malattie da tospovirus sono quasi sempre letali, il che comporta danni economico-produttivi di rilievo. Infatti, i sintomi indotti da TWSV (del tutto simili a quelli dovuti a INSV) sono riconducibili a necrosi, imbrunimenti fogliari circoscritti (spots), in molti casi confluenti in aree più estese, ed anulature concentriche, tali da rendere la pianta non più commercializzabile. Anche per TSWV vale il discorso dell’aspecificità dei sintomi, con conseguenti inevitabili ritardi in termini di diagnosi e profilassi. Escludendo al momento la trasmissione dei tospovirus per seme, la via primaria di diffusione in Natura è quella che si avvale di tripidi, primo fra tutti Frankliniella occidentalis. Tra le associazioni virus-insetto vettore, il rapporto tospovirus-tripide è particolare, in quanto il virus può essere acquisito solo dalle neanidi (di seconda età), per poter essere poi trasmesso sia dalle neanidi che dagli adulti. Questi ultimi possono spostarsi autonomamente, oppure essere trasportati dal vento anche a lunga distanza e diffondere facilmente l’infezione. Di seguito vengono descritti alcuni dei casi personalmente affrontati negli ultimi anni soprattutto in Liguria, regione in cui la capillare diffusione di TSWV e dei tripidi è favorita dalla stretta vicinanza di piccole coltivazioni all’aperto di molte specie suscettibili al virus e ricovero dei vettori naturali, cui si aggiunge una scarsa manutenzione delle zone limitrofe, ricche d’infestanti che contribuiscono alla conservazione di TSWV ed alla proliferazione dei tripidi.

I virus che negli ultimi anni hanno causato danni economici ingenti alle coltivazioni di zinnia in Europa ed ovunque si coltivi questa asteracea sono i due tospovirus: TSWV (v. dell’avvizzimento maculato del pomodoro) ed INSV (v. della maculatura necrotica dell’impatiens). Il primo, responsabile di necrosi e mosaico sulle foglie, malformazione e decolorazione dei petali ed avvizzimento, è stato isolato nel 1997 in Australia, nel 1998 in Iran (zona di Tehran), poi nel 2000 in Francia, nel 2006 in vivai del Messico e nel 2008 in Ungheria; la sua presenza viene ormai considerata ubiquitaria in USA. Solamente di recente, e precisamente nel 2013, INSV è stato isolato per la prima volta da piante di zinnia in Iran (sempre nella zona Tehran) da piante di ridotta dimensione (nanismo), caratterizzate da “spots” necrotici e clorosi fogliari. Si riportano i risultati di un’indagine epidemiologica eseguita nel 2014 nella Piana di Albenga e che ha visto come protagonista una coltivazione di zinnia in vaso caratterizzata da una grave malattia ad eziologia virale: per la prima volta in Italia questa pianta è risultata ospite naturale di TSWV.

Iberis semperflorens L. (Family Brassicaceae) is a perennial evergreen shrub, endemic to southern Italy and Sicily and it has been recently proposed as flowering potted plants for commercial purposes (Iapichino and Bertolino, 2009). During summer 2013, symptoms of chlorotic/necrotic spots and rings were observed in some plants of I. semperflorens potted plants, cultivated in a greenhouse at Albenga (Northwest Italy). Around 5% out of 500 plants were symptomatic and from these plants samples were collected and tested by commercial DAS-ELISA kits for tospoviruses (Agdia, USA). A positive reaction was obtained only with Tomato spotted wilt virus (TSWV) antiserum. Total RNA was extracted from leaves of ELISA positive samples using EZNA total RNA kit (Omega BioTek, USA) and used as template in RT-PCR reactions to confirm the presence of TSWV by using tospo-generic primers, designed to amplify partial coat protein gene (CP) of tospoviruses (Eiras et al., 2001). PCR products of the expected size (453 bp) were cloned in pGEMT Vector (Promega, USA) and two independent clones sequenced at MWG Biotech (Ebersberg, Germany). The consensus sequence (accession No. XXXXX) was compared with other TSWV sequences available in GenBank using DNAMAN. The partial CP sequence showed 99.5% nucleotide identity with several Italian TSWV isolates (HQ839729-31, DQ376177-9, DQ376183, DQ915946). This new finding suggests that I. semperflorens is a newly established TSWV natural host (Parrella et al., 2004) and that it may play a role as reservoir of the virus in nature.

La margherita africana (African daisy; Arctotis x hybrida, famiglia delle Asteraceae) è un’erbacea perenne tappezzante originaria dell’Africa meridionale la cui altezza può raggiungere i 60-70 cm. E’ una pianta apprezzata per la fioritura non solo vivace ma anche prolungata, molto adatta per creare bordure ed aiuole. Come quelli della gazania, anche i fiori degli ibridi di Arctotis si schiudono solo quando splende il sole. Nella Piana di Albenga (Savona) la margherita africana è allevata in pieno campo; le talee radicate sono messe a dimora nel vaso di 14 cm di diametro in ottobre; la commercializzazione della pianta fiorita avviene in primavera, a partire dal mese di marzo. La sua coltivazione non pone eccessivi problemi dal punto di vista sanitario: si tratta, infatti, di piante difficilmente attaccate da parassiti o da malattie in genere, fatta eccezione per i marciumi basali, le “muffe” da Botrytis cinerea e gli attacchi di afidi molto pericolosi a primavera per i giovani boccioli. A partire dal mese di novembre del 2012, in un’azienda dove la coltivazione principale è rappresentata dalla dimorfoteca (Dimorphoteca spp.; sin. Osteospermum spp.) (con una produzione di circa 20.000 esemplari l’anno), è stata osservata una grave malattia riguardante la margherita africana (presente nell’azienda con oltre 2.000 vasi). Considerata la gravità dei sintomi che la contraddistinguevano, alcuni esemplari sono stati inviati al CNR di Portici (Napoli) ed all’Università di Bologna (DiPSA) per le analisi del caso. Di seguito si riporta una sintesi dei risultati conseguiti che vedono ancora una volta protagonista il virus dell’avvizzimento maculato del pomodoro (Tomato spotted wilt virus: TSWV), tospovirus che negli ultimi anni abbiamo spesso riscontrato in coltivazioni di ornamentali (lupino, calla bianca, margherita, ciclamino, ecc.) della Riviera Ligure di Levante.

Nel maggio 2012 in una coltivazione in vaso di lupino ornamentale (Lupinus polyphyllus Lindt.; famiglia Fabaceae) della zona di Albenga (Savona) sono state notate numerose piante caratterizzate da una grave sintomatologia sulle foglie tipicamente riferibile all’infezione da Tospovirus: anulature concentriche clorotiche, rosso-arancio e/o nerastre; i fiori apparivano leggermente screziati. Alcuni degli esemplari con sintomi fogliari erano inoltre di taglia ridotta, gli steli fiorali erano vistosamente ripiegati “a gomito” e le foglie più giovani rimanevano piccole e raggomitolate. Dalle analisi sierologiche eseguite applicando la tecnica LFT è risultato che in tutte le piante con anulature concentriche sulle foglie era presente il virus dell’avvizzimento maculato del pomodoro (TSWV) che è stato trasmesso con inoculazione meccanica su specie erbacee fra cui basilico, fava e peperone (sintomi locali e sistemici di necrosi ed avvizzimento) e fagiolino dall’occhio (anulature locali). L'identità del virus è stata confermata anche mediante RT-PCR, impiegando per lo scopo “primers” specifici per il gene NSM di TSWV. Tali “primers”, infatti, hanno prodotto, solo nei campioni provenienti dalle piante con anulature clorotiche, un amplicone della lunghezza attesa (670 bp). Due degli ampliconi ottenuti, da provenienti da due piante sintomatiche distinte, sono stati clonati e sequenziati alla MWG (Germania). Le sequenze ottenute sono risultate 100% identiche fra loro, mentre confrontandole con le sequenze di TSWV presenti in GeneBank sono risultate per il 99,25% identiche a due isolati di TSWV (35-2 e 43-2). Inoltre, nelle piante infette da TSWV e caratterizzate anche da nanismo e ripiegamento dello stelo fiorale, è stata verificata la presenza di fitoplasmi appartenenti al gruppo ribosomico 16SrXII-A noto anche come “stolbur”. Infezione da TSWV in lupino in Italia, e precisamente ad Albenga, era già stata descritta nel 2007, ma il virus non era stato caratterizzato dal punto di vista molecolare (Bellardi et al., 2008). Dai dati ottenuti l’isolato TSWV-L. polyphyllus si inserisce nella tipologia “A” cui afferiscono anche gli isolati di TSWV detti RB (“Resistant Breaking”) in quanto capaci di superare la resistenza a TSWV in pomodoro. Per quanto riguarda l’infezione da fitoplasmi “stolbur”, si tratta del primo caso di infezione naturale in L. polyphyllus. Dal punto di vista epidemiologico di particolare rilievo risulta l’associazione di questi due patogeni, conseguenza di contemporanee infestazioni nella coltivazione di lupino ornamentale oggetto di studio di tripidi e cicadellidi, vettori di Tospovirus e fitoplasmi rispettivamente.

Abbiamo mai riflettuto sul fatto che alcune piante quando assomigliano, vuoi per la forma delle foglie, vuoi per il colore ed il profumo dei fiori, ad un’altra specie, generalmente molto comune, vengono volgarmente chiamate con un appellativo che ricorda appunto la pianta di riferimento? Facciamo un esempio: se diciamo “Gelsomino azzurro”, ci riferiamo in realtà al delicato Plumbago capensis, mentre se parliamo del “Falso gelsomino” raccontiamo del robusto Trachelospermum jasminoides, ma se invece ci regalano un bell’esemplare di “Gelsomino del Madagascar” vuol dire che fra le nostre piante farà bella mostra di se una Stephanotis floribunda. Una pianta robusta… A proposito di S. floribunda, è curioso sapere che da non molti anni alcune aziende liguri si stanno specializzando nella produzione di questa bella e vigorosa pianta rampicante. Infatti, si sta rivelando “gelsomino” di successo: innanzitutto è sempreverde, poi ha foglie lucide e cuoiose molto belle e decorative, mentre i fiori non solo assomigliano nella forma, nel colore (sono bianchi) e per il profumo intenso a quelli del gelsomino, ma sono più carnosi e consistenti. Ovviamente, bisogna che non soffra il freddo e, proprio per questo, può essere coltivato anche come pianta da appartamento avendo cura che durante la fioritura non subisca degli sbalzi termici causa di distacchi totali o parziali dei boccioli. ….ma non sempre Una curiosità. Nonostante sia una pianta robusta (teme al limite gli attacchi da cocciniglia cotonosa), può capitare di acquistarne una con delle alterazioni cromatiche sulle foglie che sembrano delle vere e proprie opere di cesellatura. Può essere magari solo una foglia o due ad essere interessata…In ogni caso, fate attenzione ai “decori”, come quelli mostrati dalle immagini. Ne abbiamo già parlato altre volte: si tratta di un virus molto pericoloso (virus dell’avvizzimento maculato del pomodoro: TSWV ) e la pianta deve assolutamente essere eliminata.

Fra le molteplici colture in vaso che caratterizzano la produzione floricolo-ornamentale della Piana d’Albenga (Savona), si annovera Stephanotis floribunda Brongn. (Gelsomino del Madagascar; Asclepiadaceae), una bella pianta rampicante sempreverde, dalle foglie ovate, cuoiose e lucide, e dai fiori bianchi, carnosi, riuniti a grappoli, leggermente profumati. Nel mese di luglio 2009, il 2% delle piante presenti nella serra di un’azienda della zona di Albenga ha manifestato sintomi fogliari consistenti in anulature necrotiche biancastre e/o nerastre, concentriche, alquanto regolari, spesso confluenti tra loro. Le foglie maggiormente interessate dal sintomo diventavano inizialmente clorotiche, poi di colore giallo-oro, lasciando un caratteristico alone verde scuro, di alcuni millimetri, attorno alle anulature. La fioritura è apparsa normale. L’impianto era stato ottenuto utilizzando talee radicate, di 5-7 cm, importate nel mese di maggio dall’Olanda. La sintomatologia così particolare, nonché le abbondanti infestazioni da tripidi che si erano verificate nei mesi precenti, hanno indotto ad ipotizzare la presenza di un Tospovirus. A seguito dell’applicazione della tecnica immunoenzimatica PAS-ELISA, nelle foglie sintomatiche di S. floribunda è stata diagnosticata la presenza di TSWV (virus dell’avvizzimento maculato del pomodoro). I saggi biologici hanno consentito di trasmettere il virus ad alcune solanacee, fra cui Solanum melongena e Capsicum annuum le quali hanno evidenziato anulature e/o lineature clorotiche sulle foglie inoculate. L’identificazione del virus è stata confermata applicando tecniche di biologia molecolare quali RT-PCR utilizzando i primers TSWV-CP(+) 5’-TTAACTTACAGCTGCTTT-3’ e TSWV-CP(-) 5’-CAAAGCATATAAGAACTT-3’ che amplificano un frammento di circa 800pb che codifica per la proteina di rivestimento (nucleocapsid protein). Successivamente, l’amplificato è stato clonato mediante un kit commerciale “Perfect Blunt Cloning Kit” utilizzando le istruzioni della casa produttrice; la sequenza ottenuta è stata confrontata con altre di riferimento depositate in GenBank. TSWV è noto infettare S. floribunda fin dal 1988 in Oregon (USA); in Europa è stato ripetutamente rinvenuto in coltivazioni di questa ornamentale della Grecia e dell’Olanda. Si tratta della prima segnalazione di TSWV in Gelsomino del Madagascar in Italia.

E’ un vero peccato quando una bella pianta ci abbandona all’improvviso e noi non possiamo fare nulla per evitarlo. Nonostante le nostre amorevoli cure, la rosa, la dalia, il garofanino o il bel gelsomino, si ammalano e non ne capiamo il motivo. Ci facciamo mille domande: in cosa abbiamo sbagliato? Nell’innaffiare, nel concimare, nello sceglierne la collocazione in casa o all’aperto? Può darsi che, in effetti, la colpa sia nostra; ma può anche essere successo l’inevitabile, perché alcune malattie sono veramente difficili da scongiurare e debellare. Prendiamo l’esempio di una bella orchidea, l’Oncidium (un vastissimo genere che comprende circa 350 specie). Sappiamo bene che gli “oncidium” hanno bisogno, fra l’altro, di un’elevata umidità dell’aria e di una buona aerazione, mal sopportando correnti d’aria fredda o calda. Eppure, nonostante tutte le loro esigenze siano state rispettate, sulle foglie piatte ed allungate che spuntano dagli pseudobulbi, compaiono delle orribili chiazze rotondeggianti brunastre, necrotiche, ed una sorta di incisioni nella lamina che man mano assume una colorazione gialla. Pensiamo subito ad un fungo, o ad una malattia batterica….ma a guardare meglio notiamo che le macchie necrotiche hanno un aspetto del tutto anomalo e particolare: si tratta di caratteristiche forme anulari, concentriche, quasi depresse nel lembo. Se riflettiamo bene, un sintomo analogo lo avevamo già incontrato in passato, a proposito delle malattie virali della glossinia e del ciclamino. Infatti, si tratta proprio di una virosi ed il patogeno coinvolto è il temibile virus dell’avvizzimento maculato del pomodoro, noto semplicemente con l’acronimo TSWV. Se il nostro Oncidium ne è infetto, i casi sono due: o l’abbiamo appena acquistato e, involontariamente, abbiamo portato a casa una pianta già malata; oppure (e non si sa in che modo), dei tripidi viruliferi (“carichi” di TSWV) sono giunti fino alla nostra orchidea e, nutrendosi sulle sue foglie, hanno trasmesso l’infezione. Una cura? Rimedio non c’è. L’Oncidium stenterà a crescere e le foglie finiranno con il marcire e cadere prematuramente. Eliminiamo al più presto questa pianta facendo in modo che non costituisca una fonte d’infezione per le altre ornamentali che si trovano nelle vicinanze.

Il genere Stephanotis (famiglia delle Asclepiadaceae ) comprende cinque specie di piante rampicanti, sempreverdi, originarie del Madagascar. La più nota ed apprezzata è la specie S. floribunda Brongn., i cui fiori tubulosi, bianchi, leggermente carnosi, riuniti in ombrelle ascellari, sbocciano da maggio ad ottobre emanando un intenso e gradevole profumo. Questi fiori ricordano molto quelli del gelsomino, pur essendo più grandi e cerosi, ma questa somiglianza è bastata ad attribuire alla pianta l’appellativo “gelsomino del Madagascar”. S. floribunda costituisce una coltura di recente introduzione nella Piana di Albenga (Savona): la sua coltivazione è per ora limitata a poche aziende che producono circa 12000 esemplari in serra riscaldata. L’impianto viene ottenuto utilizzando talee radicate di 5-7 cm, importate dall’Olanda. Dal punto di vista patologico, il gelsomino del Madagascar si è rivelata fino ad oggi una pianta alquanto robusta. Per quanto riguarda i virus, l’unico fino ad oggi indicato quale agente patogeno di questa asclepiadacea è il Tospovirus TSWV (tomato spotted wilt virus, virus dell’avvizzimento maculato del pomodoro), individuato per la prima volta nel 1987 in Oregon (USA); in Europa è stato ripetutamente rinvenuto in coltivazioni di gelsomino del Madagascar di Grecia ed Olanda. Data la pericolosità di questo virus, notoriamente trasmesso in natura da alcune specie di tripidi fra cui il tristemente famoso F. occidentalis, abbiamo ritenuto utile e doveroso informare i produttori di ornamentali circa il recente caso che ha coinvolto il gelsomino del Madagascar e che costituisce la prima segnalazione d’infezione naturale da TSWV su questa specie in Italia. Reperimento dei campioni – Nel mese di luglio del 2009, in un impianto in serra di S. floribunda è stata notata una vistosa alterazione cromatica sulle foglie. In particolare, nelle fasi iniziali della malattia, i sintomi consistevano in anulature necrotiche concentriche, di colore biancastro. Queste anulature, molto regolari ed ampie alcuni centimetri, erano localizzate nelle zone centrali del lembo, oppure in quella apicale. Con il passare del tempo, si assisteva alla comparsa di anulature di minore dimensione, confluenti tra loro, e tali da formare ampie aree costituite da anelli verde scuro alternati ad altri cloro-necrotici. Queste aree venivano poi circoscritte ad un alone verde cupo, decisamente contrastante con il restante verde chiaro della foglia. Infine, le anulature assumevano una colorazione bruno-nerastra, nettamente distinta dal colore giallo oro del lembo circostante. Questi sintomi interessavano generalmente poche foglie di una stessa pianta. Non si è notata alcuna influenza sulla fioritura, anche se gli individui con i sintomi descritti sono apparsi meno vigorosi. Indicativamente, la malattia ha interessato il 2% delle piante in produzione. Alcuni individui sintomatici sono stati sottoposti alle indagini virologiche del caso. Il rinvenimento di TSWV in gelsomino del Madagascar, pur costituendo una novità per il nostro Paese, non deve meravigliare. Più volte, infatti, nel corso di indagini epidemiologiche riguardanti i Tospovirus, eseguite in coltivazioni di ornamentali ed aromatiche della zona di Albenga e Sanremo, sono stati individuati ospiti del tutto “nuovi”, ossia mai segnalati in precedenza .

Le malattie che in Liguria coinvolgono la coltivazione in vaso di margherita (Argyranthemum frutescens) sono molte e alcune purtroppo, anche gravi. Basti pensare alla Tracheofusariosi causata da Fusarium oxysporum, ai Marciumi da Phytophtora spp. e da Sclerotinia sclerotiorum, per proseguire con le malattie fogliari quali la Peronospora da Peronospora sp., la Ruggine da Uredo spp. (osservata soprattutto su cvs di margherita a fiore giallo), l’Alternariosi da Alternaria sp. (che colpisce soprattutto le cvs di margherite colorate). Presenti, anche se di minore importanza, sono la Fialofora dovuta a Phialophora asteris, la Tracheoverticilliosi da Verticillium dahliae ed il Mal bianco da Oidium sp.; gravi, ma sporadici, gli attacchi di Tumore batterico da Agrobacterium tumefaciens. Si registra anche la presenza di fitoplasmi sulle cvs a fiore bianco, ma soprattutto sulla cv Yellow star, a fiore giallo, coltivata all’aperto. Tutte queste malattie costituiscono una seria minaccia per la produzione di piante in vaso di margherita della Liguria, dove i coltivatori sono costretti a continui interventi sia di tipo preventivo (quale disinfezione del terreno, impiego di materiale di propagazione sano, adeguata spaziatura tra le piante, eliminazione degli individui infetti, ecc.), che chimico, facendo ricorso a diversi trattamenti fungicidi con prodotti specifici. Per quanto riguarda le malattie virali, nonostante la margherita sia suscettibile all’infezione da diversi virus (CMV: virus del mosaico del cetriolo; CVB: virus B del crisantemo; CVF: rhabdovirus della margherita, ecc.), in Liguria non si sono mai registrati casi particolarmente gravi, tali cioè da compromettere la produzione degli impianti. Si ricordano, ad esempio, le infezioni da LMV (virus del mosaico della lattuga) su piante cv Yellow Star caratterizzate da sviluppo ridotto e minuta maculatura brunastra sulle foglie, e da SMV (virus del mosaico della soia), identificato su margherite cv Imperia Gialla con sintomi di marcata maculatura gialla sulla lamina fogliare (Bellardi et al., 1993). Si è trattato, comunque, di casi del tutto sporadici. Il quadro patologico in materia di virus della margherita è totalmente cambiato dell’ultimo decennio a seguito della comparsa in Italia (nel 1989) e successiva diffusione in Liguria, così come in tutte le regioni Italiane, dei due Tospovirus TSWV (virus dell’avvizzimento maculato del pomodoro) ed INSV (virus della maculatura necrotica dell’impatiens), patogeni di cui ci siamo più volte occupati in questi ultimi anni a causa dei notevoli danni economici registrati in coltivazioni di numerose specie da fiore e da fronda (vedi, ad esempio, il ruscus, il lupino, la calla bianca, il papavero, ecc.) (Clamer informa 2006, N.4 e N.7/8; 2007, N.1). TSWV è stato rilevato per la prima volta in Liguria, nella zona di Albenga (Savona), nel gennaio del 1996, dapprima su sole due cvs, “Tesi” e “Roberta”, ad infiorescenza bianca e rosa rispettivamente, caratterizzate da una vivace maculatura gialla e, a volte, da piccole macchie necrotiche (“spots”) sulle foglie; le piante infette erano di taglia ridotta (Roggero et al., 1998). In seguito, è stata coinvolta anche la cv Yellow Star (che nella precedente indagine non era stata riscontrata infetta da TSWV), coltivata sempre ad Albenga, i cui sintomi consistevano esclusivamente in necrosi dello stelo, senza cioè alterazioni sulle foglie. Le necrosi procedevano in senso acropeto determinando anche un’evidente distorsione dell’asse vegetativo; nei casi più gravi, l’infezione aveva esito letale. Questa malattia è stata individuata sulla “Yellow Star” coltivata ad alberello dapprima nel 1997 e nuovamente, nell’ottobre del 1999, su piante madri allevate in diverse aziende per la produzione di talee, con incidenza oscillante dal 15 al 50%. Da notare, rispetto al precedente caso del 1996, che la sintomatologia era completamente diversa in quanto interessante esclusivamente il fusto (anche le analisi sier...

I lupini ornamentali (nelle diverse specie ed nei numerosi ibridi in commercio) sono delle piante erbacee annuali o perenni molto richieste per il facile utilizzo nell’allestimento di aiuole e bordure, in giardini sia di ampie che di modeste dimensioni. Fra le specie perenni, la più nota ed utilizzata è Lupinus polyphyllus Lidl, originaria della zona compresa fra la Columbia Britannica e la California, i cui racemi fiorali, lungi fino a 60 cm., sono di colore bianco, blu, rosa o violetto (Figura 1). L. polyphyllus costituisce anche la specie del genere Lupinus maggiormente coltivata nella Riviera ligure di Ponente, soprattutto nella zona di Albenga (Savona), ove se ne producono annualmente circa 40.000 vasi. Per quanto riguarda le tecniche agronomico-colturali, ricordiamo solamente che questa specie viene coltivata all’aperto, in zone ben esposte alla luce. La propagazione è per via gamica: la semina si effettua in agosto e, dopo circa 3 settimane, le giovani piantine vengono trapiantate singolarmente in vaso (diametro 18). La concimazione è generalmente ricca in fosforo e potassio, scarsa in azoto. Le Virosi Fino ad oggi sono state individuate e descritte nelle diverse specie di lupino ornamentale numerose malattie, virali e fungine, in grado di compromettere la produttività degli impianti. Per quanto riguarda i virus, il più comune e frequente nelle coltivazioni al chiuso o all’aperto di Lupinus spp. è il virus del mosaico del cetriolo (Cucumber mosaic virus: CMV), seguito da quello del mosaico giallo del fagiolo (Bean yellow mosaic virus: BYMV) e dal virus del mosaico dell’erba medica (Alfalfa mosaic virus: AMV). Di questi tre virus, tutti altamente polifagi, trasmissibili per seme e per mezzo di afidi (modalità della non-persistenza), abbiamo più volte parlato in passato, in quanto responsabili di malattie più o meno gravi su molte specie ornamentali, erbacee e/o arbustive: vedi il “mosaico giallo” da AMV in viburno, lavanda e lavandino, peonia, Ruscus, ecc.; le “screziature” sui fiori di molte bulbose e rizomatose (gladiolo, iris, orchidacee, lilium, ranuncolo, ecc.) associate alla presenza di CMV e/o BYMV. Nel corso delle numerose ricerche di tipo virologico eseguite negli ultimi decenni in diverse parti del mondo, sono stati individuati in alcuni generi di Lupinus ulteriori virus non ancora sufficientemente caratterizzati, quali: Lupinus yellow vein virus (virus dell’ingiallimento nervale) descritto nel 1972 in UK in L. polyphyllus x L. arboreous, e Nootka-lupine vein clearing virus (virus dello schiarimento nervale), descritto nel 2004 in Alaska in L. nootkatensis. A tutti questi virus deve essere infine aggiunto quello dell’avvizzimento maculato del pomodoro (Tomato spotted wilt virus: TSWV), Tospovirus agente di malattie gravi in tutti i lupini (specie ed ibridi) su cui è stato fino ad oggi riscontrato. Di seguito riportiamo i risultati di un’indagine eseguita in alcune coltivazioni di L. polyphyllus della zona di Albenga e che hanno portato, per la prima volta in Italia, all’individuazione di TSWV. 1Dipartimento di Scienze e Tecnologie Agroambientali (DiSTA) - Patologia Vegetale, Alma Mater Studiorum, Università di Bologna 2 Società Cooperativa L’Ortofrutticola, Albenga (Savona) 3 Servizio Fitosanitario Regione Emilia-Romagna - Bologna Materiali e Metodi Reperimento dei campioni. I campioni oggetto di studio sono stati reperiti nel corso di alcuni sopralluoghi eseguiti nel mese di maggio del 2007 in aziende della zona di Albenga. Gli impianti visitati, posti all’aperto, erano costituiti da piante dell’età di 7-8 mesi. Una grave malattia fogliare è stata osservata su circa il 15% di esse. I sintomi consistevano, inizialmente, in macchie clorotiche rotondeggianti e malformazione del lembo (Figg. 2,3); successivamente, apparivano delle aree necrotiche bruno/rossicce (“spots”), vistosi avvizzimenti e disseccamenti delle foglie (Figure 4,5,6). Da un primo esame visivo, i sintomi pr...

Esistono in natura almeno 200 specie di lupini (Lupinus spp.; famiglia delle Fabaceae), molte delle quali annuali o perenni, altre legnose, la cui notorietà è collegata all’importanza che hanno avuto fin dall’antichità come alimento (si hanno notizie di coltivazioni egizie del 2000 a.C.) o come piante di indubbia bellezza. Anche oggi i lupini ornamentali (nelle diverse specie ed nei numerosi ibridi in commercio) sono molto richiesti per il facile utilizzo nell’allestimento di aiuole e bordure in giardini anche di modeste dimensioni (le specie annuali nordamericane sono infatti di taglia molto contenuta), oppure in ampi parchi ricorrendo alle specie perenni, dotate di un folto fogliame da cui si ergono fantastiche spighe. Tra le specie perenni, L. polyphyllus Lidl., originario della zona compresa fra la Columbia Britannica e la California, è fra le più apprezzate da chi desidera un giardino informale, dato che si presta molto bene alla “crescita spontanea”, anche tra l’erba alta, producendo racemi lunghi fino a 60 cm di colore variabile dal bianco al blu, dal rosa al violetto. Il lupino ornamentale (nelle diverse specie o ibridi) in Liguria è prodotto soprattutto nella Riviera di Ponente, zona di Albenga (Savona) come coltura ornamentale in vaso. Il più coltivato è L. polyphyllus di cui se ne producono annualmente circa 40.000 vasi (diametro 18). I semi vengono posti a germinare in contenitori alveolari verso la metà di Agosto; dopo circa 3 settimane le giovani piante si trapiantano singolarmente nel vaso definitivo. La coltivazione avviene all’aperto in zone ben esposte alla luce: la qualità e la quantità della fioritura primaverile vengono infatti favorite da un esposizione soleggiata. Il lupino è una leguminosa fissatrice di azoto e, di conseguenza, la concimazione deve essere scarsa in questo elemento e ricca in fosforo e potassio, in modo da ottenere piante robuste e compatte. Le principali malattie Dal punto di vista patologico, mentre le specie annuali vengono considerate pressoché “immuni” da gravi problemi, le perenni e gli ibridi sono invece soggetti a diverse malattie, soprattutto fungine, dovute a patogeni diversi fra cui Alternaria alternata, Phythium paroecandrum, Colletotrichum gloeosporioides, Rhizoctonia solani, Phytophthora erythroseptica e Verticillium dahliae (Trapero-Casas et al., 2000; Colbaugh et al., 2001; Elmer et al., 2001; Chang et al., 2005; Garibaldi et al., 2007). Per quanto riguarda le malattie virali, sulle diverse specie di lupino sono stati fino ad oggi individuati virus notoriamente polifagi e diffusi ovunque (tabella 1), primo fra tutti quello del mosaico del cetriolo (Cucumber mosaic virus: CMV) (in L. angustofolius) (Trackray et al., 2004), seguito da alcuni specifici delle leguminose (Fabaceae), fra cui il virus del mosaico giallo del fagiolo (Bean yellow mosaic virus: BYMV) (in L. albus, L. angustifolius e L. luteus) (Jones et al., 2003) e quello del mosaico comune del fagiolo (Bean common mosaic virus: BCMV) (in L. luteus) (Frencel e Pospieszny, 1979), il virus del mosaico della soia (Soybean mosaic virus: SMV) (in L. albus cv Hamburg) (Vroon et al. 1988), il virus dell’avvizzimento della fava (Broad bean wilt virus: BBWV) (in ibridi “Russell” e Lupinus spp.) (Schmidt e Schubert, 1979) e quello del mosaico dell’erba medica (Alfalfa mosaic virus: AMV) (in L. albus, L. angustifolius, L. hartwegii) (Baszczak e Pospieszny, 1987; Alberts et al., 1997), a cui se ne affiancano altri specifici del genere Lupinus ma non ancora caratterizzati, come Lupinus yellow vein virus (descritto nel 1972 in UK in L. polyphyllus x L. arboreous), Lupinus leaf curl virus (descritto nel 1974 in L. hartwegii in India e nel 1989 in Australia) e Nootka-lupine vein clearing virus (descritto nel 2004 in Alaska in L. nootkatensis) (Verma, 1974; Jones e Mclean, 1989; Robertson, 2004). A tutti questi virus deve essere aggiunto quello dell’avvizzimento maculato del pomodoro (Tomato spotted wilt...

La coprosma (Coprosma spp.; famiglia delle Rubiaceae) ormai non costituisce più una novità per quanto riguarda il mercato delle specie da fronda. Introdotta nella Riviera Ligure di Ponente verso la fine del secolo scorso, è ora coltivata anche in molte regioni del sud Italia, fra cui la Sicilia. Dal punto di vista agronomico-culturale, infatti, le specie del genere Coprosma non presentano molti problemi: si adattano a condizioni ambientali e soprattutto climatiche anche alquanto estreme (siccità, suoli in vicinanza del mare battuti da venti forti e carichi di salsedine, ecc.), tollerano bene le potature, possono essere facilmente propagate agamicamente, hanno una crescita rapida, gli impianti sono a basso costo ed abbastanza remunerativi. La specie più conosciuta ed anche la più studiata dal punto di vista botanico è C. repens A. Rich, nota come Coprosma bauberi (Auct. non Endl.): un arbusto od un piccolo alberello alto da 1,8 fino a 7 metri, molto frondoso, a portamento prostrato (anche se i nuovi germogli hanno un portamento verticale); le foglie sono opposte, molto lucide (da cui l’appellativo di “Mirror bush”: pianta specchio), ovato-oblunghe, leggermente coriacee. Fra le varietà più belle e decorative, in quanto dal fogliame variegato, vi sono la “Painter’s Palette” (lembo verde ai margini e dai toni giallo-arancio e bronzati nelle zone centrali), “Kiwi Gold” e “Taupata Gold” (foglie variegate di giallo e/o bianco). Le malattie La coprosma va soggetta ad attacchi di patogeni del piede quali Pythium, Rhizoctonia e Phytophthora, che determinano repentini disseccamenti della vegetazione prevalentemente durante la stagione primaverile-estiva. In questi casi, è opportuno intervenire tempestivamente, all’apparire dei primi sintomi, con prodotti a base di Tolclofos-metile, Benalaxil, Metalaxil-M, Iprodione. Recentemente, in Sicilia, si è verificato un grave caso di infezione virale. Considerata l’elevata percentuale di individui sintomatici ed il pericolo che l’agente patogeno coinvolto possa diffondersi alle coltivazioni limitrofe, si ritiene opportuno informare i produttori di fronde ornamentali del sud Italia fornendo, nel contempo, maggiori dettagli sulla malattia. Diagnosi Nel febbraio nel 2007, in un vivaio sito in provincia di Catania, è stata osservata una malattia sulle foglie di C. repens “Taupata Gold” i cui sintomi, localizzati esclusivamente sulle foglie più vecchie e soprattutto nelle zone del lembo di colore biancastro, consistevano in macchie necrotiche circolari (“spots”), ma soprattutto in “anulature concentriche”. La malattia interessava circa il 60% delle piante presenti (età di 1 anno), ottenute per talea. Essendo sintomi tipicamente riferibili alla presenza di Tospovrus, sono state eseguite indagini di routine effettuando inoculazioni meccaniche su piante di saggio appartenenti alle solanacee ed applicando la tecnica immunoenzimatica PAS-ELISA. Fra le specie inoculate, il tabacco (Nicotiana tabacum L.) ha manifestato lesioni necrotiche locali e successivamente sintomi sistemici, sempre di tipo necrotico. La tecnica ELISA, utilizzando un siero specifico fornito dall’American Type Culture Collection, Manassas, VA, USA, ha permesso di identificare il virus presente nelle piante sintomatiche di coprosma e trasmesso meccanicamente su tabacco, come un isolato del virus dell’avvizzimento maculato del pomodoro (Tomato spotted wilt virus: TSWV). L’isolato di TSWV-C. repens è stato caratterizzato dal punto di vista molecolare applicando la tecnica RT-PCR (reverse transcription-polymerase chain reaction) utilizzando “primers” specifici per il gene CP (5’-TTA ACT TAC AGC TGC TTT-3’ e 5’-CAA AGC ATA TAA GAA CTT-3’) ed ottenendo frammenti di DNA di 823 bp. A seguito della clonazione e del sequenziamento, è stata accertata un’omologia compresa fra il 96 ed il 99% con le sequenze di TSWV disponibili in GenBank, a conferma che il Tospovirus individuato in coprosma è effettivamente un isolato di TSWV. C...

Il Papavero d’Islanda (Papaver nudicaule; Papaveraceae) costituisce una delle più importanti coltivazioni del distretto floricolo di Sanremo. Si tratta di una specie a propagazione gamica: la semina si effettua in giugno/luglio (direttamente a dimora seguita da diradamento, oppure in contenitori alveolari) per ottenere la fioritura in autunno/inverno. Per quanto riguarda le operazioni colturali e le specifiche esigenze di questo Papavero (natura del terreno, pH, concimazioni, irrigazioni, ecc.,) si rimanda all’articolo apparso su Clamer informa 7/8 del 2003, nel quale viene anche fornito un quadro completo delle malattie più pericolose e frequenti negli impianti liguri. In particolare, vengono indicati i patogeni fungini che attaccano prevalentemente le radici (Phytium spp., Phytophtora spp., Sclerotinia spp. e Rhizoctonia solani), l’apparato fogliare (Erysiphe polygoni, Peronospora arborescens, Botrytis cinerea) o l’intera pianta (Helminthosporium spp. e Verticillium dahliae). A questi patogeni fungini si aggiungono pericolosi insetti fitofagi fra cui il tripide Frankliniella occidentalis responsabile di arricciamenti e deformazioni ben visibili su germogli e petali. In questo quadro complessivo delle malattie parassitarie del Papavero d’Islanda non compaiono le virosi. Da indagini eseguite nel 2006 in alcune aziende dell’estremo Ponente Ligure specializzate nella produzione di fiori recisi di Papavero è risultata invece la presenza, per la prima volta, del virus dell’avvizzimento maculato del pomodoro (tomato spotted wilt virus: TSWV), da solo od in associazione con quello del mosaico del cetriolo (cucumber mosaic virus: CMV). Di TSWV ci siamo già occupati di recente descrivendo gravi malattie che hanno interessato il ruscus (Danae racemosa) e la calla bianca (Zantedeschia aethiopica) coltivati sempre nella zona sanremese. Come è noto, si tratta di un virus altamente polifago che sta attualmente compromettendo la produzione di alcune importanti specie ornamentali da fiore reciso di tutta la Liguria, come ad esempio il ranuncolo. Alla luce dei primi ritrovamenti di TSWV e di CMV in Papavero d’Islanda, appare necessario ed urgente informare i coltivatori affinché adottino tutte le misure di profilassi più idonee che ne scongiurino l’ulteriore diffusione. Materiali e metodi, Risultati Reperimento dei campioni - I campioni di Papavero d’Islanda oggetto di studio sono stati reperiti nel corso di sopralluoghi eseguiti nei mesi di ottobre/novembre 2006. Gli impianti esaminati, in piena aria, erano costituiti da piantine ottenute da seme proveniente dall’azienda stessa oppure da materiale da ricoltivare acquistato da vivaisti locali. Alcune delle piante in produzione, della grandezza di circa 15-20 cm evidenziavano sintomi fogliari consistenti in macchie clorotiche e necrotiche (“spots”) e necrosi diffuse. Le lamine apparivano più strette del normale e vistosamente malformate. Nel complesso, la taglia delle piante era ridotta. Da un primo esame visivo, i sintomi, e soprattutto le ampie zone necrotiche, sono stati diagnosticati quali tipici dell’infezione da TSWV. Considerando però che in Letteratura alcune specie del genere Papaver sono state indicate quali ospiti naturali di altri virus, fra cui CMV (tabella 1), e che la diffusione di entrambi i virus (TSWV e CMV) nelle coltivazioni floricole ed orticole della Liguria è attualmente elevata, sono state effettuate specifiche analisi per rilevarne l’eventuale presenza nei campioni in esame. Analisi virologiche: Nel succo fogliare estratto da Papavero d’Islanda sintomatico, ed osservato al microscopio elettronico Philips CM10 (tecnica del leaf-dip), non sono state individuate particelle virali allungate (filamentose e/o bastocelliformi). Al fine di individuare la presenza di TSWV e/o di CMV è stata applicata la tecnica ELISA nella versione indiretta (PAS-ELISA) utilizzando il siero policlonale anti-TSWV (PVAS-450) e quello anti-CMV (PVAS-30) (American Type Culture Col...

Molti elementi contribuiscono a conferire alla calla bianca (Zantedeschia aethiopica) un aspetto assolutamente unico ed inconfondibile. Le ampie foglie, ad esempio, larghe più di 10 centimetri, cuoriformi o sagittate, sono di un bel colore uniforme verde intenso. L’elemento però maggiormente caratteristico ed attraente è il fiore o, più esattamente, la spata fiorale, quella foglia trasformata che, come un grande petalo dalla curvatura imbutiforme, avvolge l’infiorescenza cilindrica centrale (spadice) sulla quale sono presenti minuscoli fiorellini gialli. Secondo le tendenze estetiche che valorizzano le linee pulite, discrete e misurate, per questo suo aspetto sobrio ed essenziale, la calla bianca è considerata assolutamente trandy. Il suo fiore è adatto a contesti moderni e minimalisti, perfetto per illuminare ogni interno con la sua innata eleganza, ideale anche per aggiungere una nota di delicatezza a balconi, aiuole e giardini, Se siete tentati di acquistare qualche esemplare di calla bianca da un fioraio, ecco un utile consiglio: fate attenzione alle foglie. Macchie necrotiche Se notate degli anellini clorotici e/o gialli, oppure delle macchie rotondeggianti necrotiche, di colore bruno, disseccate, vuol dire che la calla è infetta dal virus dell’avvizzimento maculato del pomodoro (TSWV), un patogeno su cui ci eravamo già soffermati in passato a proposito della glossina (Sinningia speciosa). Inizialmente, questa virosi è alquanto subdola dato che i minuscoli anelli verde chiaro, distribuiti più o meno uniformemente sul lembo, possono passare anche inosservati. E’ solo in seguito, quando ormai abbiamo già collocato in casa o sul balcone la pianta, che iniziano a manifestarsi le necrosi, sempre più accentuate, tanto da conferire alla calla un aspetto alquanto sgradevole. Le foglie si presentano anche arricciate, ondulate e malformate. La calla infetta da TSWV finisce inevitabilmente col soccombere. TSWV è attualmente uno dei patogeni più pericolosi per le nostre colture ornamentali (ed orticole) ed il rischio di acquistare involontariamente una calla (così come un pelargonio, una margherita, un ranuncolo, un anemone, ecc.) infetta da questo virus non è affatto remoto. Per evitare quindi spiacevoli sorprese è necessario esaminare attentamente le piante al momento dell’acquisto, soprattutto ogni singola foglia.

In un recente articolo comparso su Clamer informa sono stati riportati i risultati di un’indagine virologica eseguita nella primavera-estate del 2005 ad Arma di Taggia (Imperia), in impianti di calla bianca (Zantedeschia aethiopica; Araceae) caratterizzati una grave malattia. La quasi totalità delle piante in produzione, di taglia inferiore alla norma, aveva infatti evidenziato sintomi fogliari consistenti in malformazioni (restringimento della lamina, ondulazione del margine, enazioni, arricciamenti) e striature (clorotiche e/o gialle); anche i fiori, prodotti in numero inferiore alla norma, erano apparsi malformati. Dalle analisi virologiche eseguite veniva diagnosticata le presenza del virus più frequente e pericoloso per le specie appartenenti alla famiglia delle aracee e considerato “ubiquitario” nelle coltivazioni di calla di tutto il mondo: DMV (virus del mosaico della colocasia: dasheen mosaic virus). Alla luce di questo ritrovamento, le indagini virologiche sono state estese ad ulteriori impianti liguri di calla bianca, e precisamente a quelli localizzati nella zona di Albenga (Savona). Infatti, nei mesi di rpimaverili del 2006, in alcuni di essi si sono verificate due ulteriori gravi malattie a probabile eziologia virale, malattie che hanno inciso notevolmente sulla redditività delle produzioni. Di seguito si riportano i risultati delle indagini eseguite. Materiali e metodi Reperimento dei campioni - I campioni di calla oggetto di studio sono stati reperiti nel corso di sopralluoghi eseguiti nei mesi di marzo-aprile 2006 in due diversi impianti di Albenga. Il primo era costituito da piante in vaso, allestito utilizzando materiale vegetale prodotto nella stessa azienda. La quasi totalità delle piante evidenziava sintomi fogliari consistenti nelle fasi iniziali, in anulature clorotiche, spesso concentriche, di piccole dimensioni (0,5-2 cm di diametro), distribuite prevalentemente nelle parti marginali. Successivamente, si assisteva alla comparsa di anulature necrotiche (ringspots) concentrate in ampie zone, a settori, della foglia. Il secondo impianto era costituito sempre da piante in vaso. I sintomi erano particolarmente evidenti sulle foglie apicali e consistevano prevalentemente in striature clorotiche parallele alle nervature e lieve restringimento del lembo. Nelle foglie basali delle medesime piante erano invece presenti lineature clorotiche e/o gialle che poi necrotizzavano. I fiori apparivano normali come forma e dimensione. Da un primo esame visivo, i sintomi della prima azienda sono stati diagnosticati quali tipici dell’infezione da Tospovirus: TSWV (virus dell’avvizzimento maculato del pomodoro: tomato spotted wilt virus) e/o INSV (virus della maculatura necrotica dell’impatiens: impatiens necrotic spot virus). Per quanto riguarda invece la sintomatologia riscontrata nella seconda azienda, mentre visivamente le striature clorotiche ed i restringimenti della lamina fogliare apparivano tipicamente riferibili alla presenza di DMV, le lineature cloro/necrotiche sulle foglie basali hanno destato perplessità d’interpretazione. Si è quindi proceduto con l’applicazione delle tecniche diagnostiche di tipo virologico più appropriate al fine di identificare i virus coinvolti nelle due sintomatologie descritte. Analisi virologiche: Il succo fogliare estratto dai campioni di calla sintomatica (delle due aziende) è stato osservato al microscopio elettronico Philips CM10 (tecnica del leaf-dip). Al fine di individuare la presenza di DMV, è stata applicata la tecnica di immunomicroscopia elettronica (IME) decoration. Per rilevare infezione da Tospovirus e da CMV (virus del mosaico del cetriolo: cucumber mosaic virus) sono state applicate le tecniche DAS- e PAS-ELISA. Risultati Per quanto riguarda la prima Azienda, nei campioni esaminati è stata diagnosticata in PAS-ELISA la presenza del solo TSWV. Le calle provenienti dalla seconda azienda sono risultate infette unicamente da DMV. Discussion...