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21 results on '"Kergomard, Jeanne"'

4. Polar Lipids

Author

Bourlieu, Claire, primary, Barouh, Nathalie, additional, Kergomard, Jeanne, additional, Ménard, Olivia, additional, Dupont, Didier, additional, Villeneuve, Pierre, additional, Vié, Véronique, additional, and Michalski, Marie-Caroline, additional

Published
2021
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5. Enzymatic digestion of heterogeneous plant galactolipid assemblies by pancreatic lipase related-protein 2 (PLRP2)

Author

Kergomard, Jeanne, Carrière, Frédéric, Paboeuf, Gilles, Chonchon, Lauriane, Barouh, Nathalie, Vié, Véronique, Bourlieu-Lacanal, Claire, Institut de Physique de Rennes (IPR), Université de Rennes (UR)-Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS), Ingénierie des Agro-polymères et Technologies Émergentes (UMR IATE), Institut National de Recherche pour l’Agriculture, l’Alimentation et l’Environnement (INRAE)-Institut Agro Montpellier, Institut national d'enseignement supérieur pour l'agriculture, l'alimentation et l'environnement (Institut Agro)-Institut national d'enseignement supérieur pour l'agriculture, l'alimentation et l'environnement (Institut Agro)-Université de Montpellier (UM), Bioénergétique et Ingénierie des Protéines (BIP ), Aix Marseille Université (AMU)-Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS), Démarche intégrée pour l'obtention d'aliments de qualité (UMR QualiSud), Centre de Coopération Internationale en Recherche Agronomique pour le Développement (Cirad)-Institut de Recherche pour le Développement (IRD)-Avignon Université (AU)-Université de La Réunion (UR)-Institut Agro Montpellier, Département Performances des systèmes de production et de transformation tropicaux (Cirad-PERSYST), Centre de Coopération Internationale en Recherche Agronomique pour le Développement (Cirad), SFEL, and Association GERLI

Subjects
liposomes, [PHYS]Physics [physics], heterogeneous monolayers, pancreatic lipase related-protein 2, galactolipids, [CHIM.ANAL]Chemical Sciences/Analytical chemistry, monolayer, [SDV]Life Sciences [q-bio], [SDV.AEN]Life Sciences [q-bio]/Food and Nutrition
Abstract

International audience; Pancreatic lipase related-protein 2 (PLRP2) exhibits remarkable galactolipase and phospholipase A1 activities, which depends greatly on the supramolecular organization of the substrates and the presence of surfactant molecules such as bile salts. It is responsible for the effective hydrolysis of the main lipids composing plant photosynthetic membranes, which represent an excellent source of omega-3 for human nutrition. The objective of the study was to understand the modulation of the adsorption mechanisms and enzymatic activity of Guinea pig PLRP2 (gPLRP2), by the physical environment of the enzyme and physical state of its substrate at the nanoscopic and microscopic scales. Langmuir monolayers were used to reproduce homogeneous and heterogeneous photosynthetic model membranes containing galactolipid, and/or phospholipid, and/or phytosterol, presenting uncharged or charged interfaces. The same lipid mixtures were also used to form micrometric liposomes, and their digestion kinetics by gPLRP2 were investigated in the presence or absence of bile salts (NaTDC) during static in vitro, so called “bulk”, digestion. The enzymatic activity of gPLRP2 onto mixed monolayer of galactolipids and/or phospholipids, and/or phytosterols was characterized with an optimum activity at 15 mN/m, in the absence of bile salts. Additionally, gPLRP2 showed enhanced adsorption onto biomimetic model monolayer containing negatively charged lipids, but the compositional complexity in these systems induced a lag phase before the initiation of lipolysis, and a slowdown in enzymatic activity. In bulk, no enzymatic activity could be demonstrated on GL-based liposomes in the absence of bile salts, probably due to the high lateral pressure of the lipid bilayers. In the presence of NaTDC (4 mM), however, gPLRP2 showed both high galactolipase and moderate phospholipase A1 activities on liposomes, probably due to a decrease in packing and lateral pressure upon NaTDC adsorption, and subsequent disruption of liposomes. The understanding of PLRP2 enzymatic activity at the level of natural plant-based assemblies open the way to new strategies to vectorize bioaccessible omega-3 and rebalance human and animal diets.; La lipase pancréatique apparentée à la protéine 2 (PLRP2) présente des activités galactolipase et phospholipase A1 remarquables, qui dépendent fortement de l'organisation supramoléculaire des substrats et de la présence de molécules tensioactives telles que les sels biliaires. Elle est responsable de l'hydrolyse efficace des principaux lipides composant les membranes photosynthétiques des plantes, qui représentent une excellente source d'oméga-3 pour la nutrition humaine. L'objectif de l'étude était de comprendre la modulation des mécanismes d'adsorption et de l'activité enzymatique de la PLRP2 de cobaye (gPLRP2), par l'environnement physique de l'enzyme et l'état physique de son substrat à l'échelle nanoscopique et microscopique. Des monocouches de Langmuir ont été utilisées pour reproduire des membranes modèles photosynthétiques homogènes et hétérogènes contenant des galactolipides, et/ou des phospholipides, et/ou des phytostérols, présentant des interfaces chargées ou non. Les mêmes mélanges lipidiques ont également été utilisés pour former des liposomes micrométriques, et leur cinétique de digestion par la gPLRP2 a été étudiée en présence ou en absence de sels biliaires (NaTDC) au cours d'une digestion statique in vitro, dite "bulk". L'activité enzymatique de la gPLRP2 sur une monocouche mixte de galactolipides et/ou phospholipides, et/ou phytostérols a été caractérisée avec une activité optimale à 15 mN/m, en l'absence de sels biliaires. De plus, la gPLRP2 a montré une meilleure adsorption sur des monocouches modèles biomimétiques contenant des lipides chargés négativement, mais la complexité de la composition de ces systèmes a induit une phase de latence avant l'initiation de la lipolyse, et un ralentissement de l'activité enzymatique. En bulk, aucune activité enzymatique n'a pu être démontrée sur les liposomes à base de GL en l'absence de sels biliaires, probablement en raison de la pression latérale élevée des bicouches lipidiques. En présence de NaTDC (4 mM), cependant, la gPLRP2 a montré des activités galactolipase élevées et phospholipase A1 modérées sur les liposomes, probablement en raison d'une diminution du packing et de la pression latérale lors de l'adsorption du NaTDC, et de la rupture ultérieure des liposomes. La compréhension de l'activité enzymatique de la PLRP2 au niveau des assemblages naturels à base de plantes ouvre la voie à de nouvelles stratégies pour vectoriser des oméga-3 bioaccessibles et rééquilibrer les régimes alimentaires humains et animaux.

Published
2023

6. Activité enzymatique sur lipides végétaux : couplage de mesures interfaciales à l'échelle moléculaire (nm) et de mesures cinétiques de dégradation à l'échelle de l'objet (µm)

Author

Kergomard, Jeanne, Institut de Physique de Rennes (IPR), Université de Rennes (UR)-Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS), Université Rennes 1, Véronique Vié, and Claire Bourlieu-Lacanal

Subjects
Membranes végétales, Hétérogénéité, Galactolipids, Digestive lipases, Lipases digestives, Heterogeneity, [SDV.AEN]Life Sciences [q-bio]/Food and Nutrition, Plant membranes, Galactolipides
Abstract

Health organizations now recommend diversifying and increasing our dietary intake of polyunsaturated fatty acids (PUFA) omega-3, which are essential for the proper functions of our cells. To meet these recommendations, plant membranes, and in particular photosynthetic membranes, represent a real potential, as they contain specific lipids, and in particular galactolipids, whose degradation by enzymatic reactions provides PUFA omega-3. Due to their particular composition, these systems present phase coexistences and thus lateral heterogeneity impacting their digestibility. In order to optimally exploit plant lipid sources, it is necessary to understand their fate in the human gastrointestinal tract. The results obtained in this research work provide an in-depth understanding of the mechanisms of interaction between digestive enzymes and plant membrane assemblies. In particular, this work is the first to investigate the digestion of heterogeneous monolayers of galactolipids and phospholipids by close analogues of the main enzymes responsible for the gastrointestinal degradation of plant lipids in humans. The originality of this study is based on a thorough characterization of the interfacial behavior of plant lipid systems, presenting a chemical heterogeneity inducing a physical heterogeneity. The digestibility of these heterogeneous plant lipid assemblies was studied at the molecular scale, but also at the micronic object scale. This work allowed to report the substrate specificity of the studied lipases and phospholipases (rDGL, sPLA2-IB, gPLRP2) on plant polar lipids. In particular, the galactolipase, but also phospholipase A1 activities of gPLRP2 were observed in heterogeneous galactolipid and phospholipid systems. The genericity of action of these enzymes with respect to the physical state of the membranes has also been demonstrated. We demonstrate here that at the lipid interfaces, a high content of polyunsaturated acyl groups can amplify the local compressibility and be an asset for the insertion of digestive lipases. This physical aspect remains to be confronted with the chemical specificity of the enzyme. Overall, plant lipid assemblies are rich in polar lipids and particularly galactolipids, which concentrate significant quantities of omega-3 PUFA, and are bioaccessible under model conditions under the action of gPLRP2. These assemblies also exhibit surface-active and oxidative stability properties characterized in this work. The galactolipase activity of PLRP2 at the level of modulable model membrane monolayers, but also at the level of natural membrane assemblies, opens the way to the development of plant-based dietary alternatives to vectorize omega-3 PUFA, and contribute to rebalancing human and animal diets.; Les organismes de santé recommandent aujourd’hui de diversifier et d'augmenter nos apports alimentaires en acides gras polyinsaturés (AGPI) oméga-3, essentiels au bon fonctionnement de nos cellules. Pour répondre à ces recommandations, les membranes végétales, et en particulier les membranes photosynthétiques, représentent un réel potentiel, car elles contiennent des lipides spécifiques, et notamment des galactolipides, dont la dégradation par des réactions enzymatiques fournit des AGPI oméga-3. De par leur composition particulière, ces systèmes présentent des coexistences de phases et donc une hétérogénéité latérale influant sur leur digestibilité. Or, afin d’exploiter de façon optimale les sources lipidiques végétales, il est nécessaire de comprendre leur devenir dans le tractus gastro-intestinal humain. Les résultats obtenus dans ce travail de recherche viennent apporter une compréhension approfondie des mécanismes d’interactions entre les enzymes digestives et les assemblages membranaires végétaux. En particulier, ce travail est pionnier sur la digestion des monocouches hétérogènes de galactolipides et de phospholipides par de proches analogues des principales enzymes responsables de la dégradation gastro-intestinale des lipides végétaux chez l’Homme. L’originalité de cette étude repose sur une caractérisation poussée du comportement interfacial de systèmes lipidiques végétaux, présentant une hétérogénéité chimique induisant une hétérogénéité physique. La digestibilité de ces assemblages lipidiques végétaux hétérogènes a été étudiée à l’échelle moléculaire, mais également à l’échelle de l’objet micronique. Ce travail a permis de rendre compte de la spécificité de substrat des lipases et phospholipase étudiées (rDGL, sPLA2-IB, gPLRP2) sur les lipides polaires végétaux. En particulier, les activités galactolipase, mais également phospholipase A1 de la gPLRP2 ont été observées au niveau des systèmes hétérogènes de galactolipides et de phospholipides. La généricité d’action de ces enzymes par rapport à l’état physique des membranes a également été prouvée. Nous démontrons ici qu’au niveau des interfaces lipidiques, une forte teneur en groupements acyls polyinsaturés peut amplifier la compressibilité locale et être un atout pour l’insertion des lipases digestives. Cet aspect physique reste à confronter avec la spécificité chimique de l’enzyme. Globalement, les assemblages lipidiques végétaux sont riches en lipides polaires et particulièrement en galactolipides, qui concentrent des quantités importantes d’AGPI oméga-3, et sont bioaccessibles en conditions modèles sous l’action de la gPLRP2. Ces assemblages présentent en outre des propriétés tensioactives et de stabilité à l’oxydation caractérisées dans ce travail. L’activité galactolipase de la PLRP2 au niveau des monocouches membranaires modèles modulables, mais également au niveau des assemblages membranaires naturels, ouvre la voie vers le développement d’alternatives alimentaires végétales pour vectoriser des AGPI oméga-3, et contribuer à rééquilibrer les régimes alimentaires humains et animaux.

Published
2022

7. What are the mechanisms of gastrointestinal lipases adsorption onto heterogenous biomimetic vegetal membranes?

Author

Kergomard, Jeanne, Carrière, F, Lambeau, G, Paboeuf, Gilles, Barouh, Nathalie, Villeneuve, Pierre, Bourlieu-Lacanal, Claire, Vié, V., Kergomard, Jeanne, Institut de Physique de Rennes (IPR), Université de Rennes (UR)-Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS), Bioénergétique et Ingénierie des Protéines (BIP ), Aix Marseille Université (AMU)-Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS), Institut de pharmacologie moléculaire et cellulaire (IPMC), Université Nice Sophia Antipolis (1965 - 2019) (UNS), COMUE Université Côte d'Azur (2015-2019) (COMUE UCA)-COMUE Université Côte d'Azur (2015-2019) (COMUE UCA)-Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS)-Université Côte d'Azur (UCA), Démarche intégrée pour l'obtention d'aliments de qualité (UMR QualiSud), Centre de Coopération Internationale en Recherche Agronomique pour le Développement (Cirad)-Institut de Recherche pour le Développement (IRD)-Avignon Université (AU)-Université de La Réunion (UR)-Institut Agro Montpellier, Institut national d'enseignement supérieur pour l'agriculture, l'alimentation et l'environnement (Institut Agro)-Institut national d'enseignement supérieur pour l'agriculture, l'alimentation et l'environnement (Institut Agro)-Université de Montpellier (UM), Ingénierie des Agro-polymères et Technologies Émergentes (UMR IATE), and Institut National de Recherche pour l’Agriculture, l’Alimentation et l’Environnement (INRAE)-Institut Agro Montpellier

Subjects
[PHYS]Physics [physics], [SDV.AEN] Life Sciences [q-bio]/Food and Nutrition, [CHIM.ANAL] Chemical Sciences/Analytical chemistry, [CHIM.ANAL]Chemical Sciences/Analytical chemistry, [PHYS.COND]Physics [physics]/Condensed Matter [cond-mat], [SDV.AEN]Life Sciences [q-bio]/Food and Nutrition, [PHYS.COND] Physics [physics]/Condensed Matter [cond-mat], [PHYS] Physics [physics]
Abstract

International audience; Gastrointestinal lipases are crucial for lipid hydrolysis and must get adsorbed onto the substrate interface prior lipolysis. Such adsorption had not been deeply investigated on biomimetic vegetal membranes. Our objective was thus to characterize such adsorption and lipolysis using complementary biophysical tools (tensiometry, ellipsometry, atomic force microscopy) and in vitro digestion.Heterogenous monolayers based on galactolipids, phospholipids, and phytosterols were used. Four lipases were studied: i) gastric lipase (GL), ii) pancreatic lipase 2 (PLRP2), (iii) pancreatic triacylglycerol lipase and its cofactor, colipase (PTL/coPTL), and (iv) pancreatic secreted phospholipase A2 (sPLA2-IB).A strong surfactant property of GL and its preferential adsorption onto expanded lipid phase and at the phase boundary were observed, in line with previous results on milk fat globule membrane. With PLRP2, changes in surface pressure indicated a lipolytic activity. Such variation was not observed upon PTL/coPTL adsorption, and may be related to the absence of activity of PTL on polar lipids. The injection of sPLA2-IB did not indicate a clear trend of lipolysis on the lipid film but changed the morphology of condensed domains.This study is a step forward to understand the interactions of gastrointestinal lipases with plant lipid membranes, an overlooked aspect of lipid digestion

Published
2022

8. Effects of processing and concentration on the oxidative stability and interfacial behavior of tree nuts oil bodies (OB)

Author

Kergomard, Jeanne, Robert, Mélina, Barouh, Nathalie, paboeuf, Gilles, Barea, Bruno, Villeneuve, Pierre, Schafer, Olivier, Wooster, Tim, Vié, V., Bourlieu-Lacanal, Claire, Institut de Physique de Rennes (IPR), Université de Rennes (UR)-Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS), Ingénierie des Agro-polymères et Technologies Émergentes (UMR IATE), Centre de Coopération Internationale en Recherche Agronomique pour le Développement (Cirad)-Université de Montpellier (UM)-Institut National de Recherche pour l’Agriculture, l’Alimentation et l’Environnement (INRAE)-Institut Agro - Montpellier SupAgro, Institut national d'enseignement supérieur pour l'agriculture, l'alimentation et l'environnement (Institut Agro)-Institut national d'enseignement supérieur pour l'agriculture, l'alimentation et l'environnement (Institut Agro), Démarche intégrée pour l'obtention d'aliments de qualité (UMR QualiSud), Centre de Coopération Internationale en Recherche Agronomique pour le Développement (Cirad)-Institut de Recherche pour le Développement (IRD)-Avignon Université (AU)-Université de La Réunion (UR)-Université de Montpellier (UM)-Institut Agro - Montpellier SupAgro, Département Performances des systèmes de production et de transformation tropicaux (Cirad-PERSYST), Centre de Coopération Internationale en Recherche Agronomique pour le Développement (Cirad), Department of Chemistry, Nestlé Institute of Material Sciences, Nestlé Research, Vers-chez-les-Blanc, CH-1000 Lausanne 26, Université de Rennes 1 (UR1), Université de Rennes (UNIV-RENNES)-Université de Rennes (UNIV-RENNES)-Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS), Centre de Coopération Internationale en Recherche Agronomique pour le Développement (Cirad)-Centre international d'études supérieures en sciences agronomiques (Montpellier SupAgro)-Université de Montpellier (UM)-Institut national d’études supérieures agronomiques de Montpellier (Montpellier SupAgro), Institut national d'enseignement supérieur pour l'agriculture, l'alimentation et l'environnement (Institut Agro)-Institut national d'enseignement supérieur pour l'agriculture, l'alimentation et l'environnement (Institut Agro)-Institut National de Recherche pour l’Agriculture, l’Alimentation et l’Environnement (INRAE), Centre de Coopération Internationale en Recherche Agronomique pour le Développement (Cirad)-Institut de Recherche pour le Développement (IRD)-Avignon Université (AU)-Université de La Réunion (UR)-Université de Montpellier (UM)-Institut national d’études supérieures agronomiques de Montpellier (Montpellier SupAgro), and Kergomard, Jeanne

Subjects
[PHYS]Physics [physics], [SDV.AEN] Life Sciences [q-bio]/Food and Nutrition, [PHYS.COND]Physics [physics]/Condensed Matter [cond-mat], [SDV.AEN]Life Sciences [q-bio]/Food and Nutrition, [PHYS.COND] Physics [physics]/Condensed Matter [cond-mat], ComputingMilieux_MISCELLANEOUS, [PHYS] Physics [physics]
Abstract

International audience

Published
2021

9. Digestibility and oxidative stability of plant lipid assemblies: An underexplored source of potentially bioactive surfactants?

Author

Kergomard, Jeanne, Carrière, Frédéric, Barouh, Nathalie, Villeneuve, Pierre, Vié, Véronique, and Bourlieu, Claire

Subjects
*PLANT lipids, *SURFACE active agents, *PLANT membranes, *UNSATURATED fatty acids, *DIGESTIVE enzymes, *LIPIDS, *PLANT proteins
Abstract

Most lipids in our diet come under the form of triacylglycerols that are often redispersed and stabilized by surfactants in processed foods. In plant however, lipid assemblies constitute interesting sources of natural bioactive and functional ingredients. In most photosynthetic sources, polar lipids rich in ω3 fatty acids are concentrated. The objective of this review is to summarize all the knowledge about the physico-chemical composition, digestive behavior and oxidative stability of plant polar lipid assemblies to emphasize their potential as functional ingredients in human diet and their potentialities to substitute artificial surfactants/antioxidants. The specific composition of plant membrane assemblies is detailed, including plasma membranes, oil bodies, and chloroplast; emphasizing its concentration in phospholipids, galactolipids, peculiar proteins, and phenolic compounds. These molecular species are hydrolyzed by specific digestive enzymes in the human gastrointestinal tract and reduced the hydrolysis of triacylglycerols and their subsequent absorption. Galactolipids specifically can activate ileal break and intrinsically present an antioxidant (AO) activity and metal chelating activity. In addition, their natural association with phenolic compounds and their physical state (Lα state of digalactosyldiacylglycerols) in membrane assemblies can enhance their stability to oxidation. All these elements make plant membrane molecules and assemblies very promising components with a wide range of potential applications to vectorize ω3 polyunsaturated fatty acids, and equilibrate human diet. [ABSTRACT FROM AUTHOR]

Published
2023
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10. Effect of processing and fat content on the oxidative stability and interfacial behavior of tree nut oil-bodies

Author

Villeneuve, Pierre, Kergomard, Jeanne, Robert, Mélina, Paboeuf, Gilles, Barouh, Nathalie, Schafer, Olivier, Wooster, Tim, Bourlieu-Lacanal, Claire, Vie, Veronique, Jonchère, Laurent, Démarche intégrée pour l'obtention d'aliments de qualité (UMR QualiSud), Centre de Coopération Internationale en Recherche Agronomique pour le Développement (Cirad)-Institut de Recherche pour le Développement (IRD)-Avignon Université (AU)-Université de La Réunion (UR)-Institut Agro Montpellier, Institut national d'enseignement supérieur pour l'agriculture, l'alimentation et l'environnement (Institut Agro)-Institut national d'enseignement supérieur pour l'agriculture, l'alimentation et l'environnement (Institut Agro)-Université de Montpellier (UM), Département Performances des systèmes de production et de transformation tropicaux (Cirad-PERSYST), Centre de Coopération Internationale en Recherche Agronomique pour le Développement (Cirad), Institut de Physique de Rennes (IPR), Université de Rennes (UR)-Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS), Nestlé Research Center | Centre de recherche Nestlé [Lausanne], Nestlé S.A., Institut Agro Montpellier, and Institut national d'enseignement supérieur pour l'agriculture, l'alimentation et l'environnement (Institut Agro)

Subjects
[PHYS]Physics [physics], [PHYS] Physics [physics]
Abstract

Oil bodies (OB) are the natural form of energy storage in oilseeds. They consist of a triacylglyceride core stabilized by proteins (mainly oleosins) embedded in a phospholipid membrane. In some tree nut species, OB contain an important amount of polyunsaturated fatty acids that make them interesting food ingredients but prone to oxidation. Due to the growing interest in minimally processed nut-based beverages, the understanding and the preservation of the physico-chemical properties of these lipoprotein assemblies are of great interest. In this context, previous inte rfacial studies have led to the proposition of a new model of adsorption for minimally processed OB that is useful to design functional emulsion or foam in which OB act as emulsifiers. The objective of the present study was to determine the impact of processing and fat content on the physico-chemical behavior of tree nut-based matrixes. The interfacial and oxidative behaviors of minimally processed isolated OB were compared with processed complex nut-based matrixes (i.e., beverages) of different fat content. Processing operations (heat-treatment, homogenization) affected OB interfacial properties and oxidative stability but fat content had even stronger impact on this last parameter, with more concentrated systems more stable to oxidation. The results underline the good physico-chemical stability of tree nut OB and raise the interest of their use in the minimally processed form to fully exploit their beneficial properties. (Texte integral)

Published
2022

11. Interfacial adsorption of gastrointestinal lipases onto heterogenous biomimetic vegetal membranes

Author

Duplessis-Kergomard, Jeanne, Bourlieu-Lacanal, Claire, Carrière, Frédéric, Lambeau, Gérard, Paboeuf, Gilles, Villeneuve, Pierre, and Vié, Véronique

Abstract

Langmuir films and their analysis by tensiometry, ellipsometry and Langmuir–Blodgett transfer coupled to atomic force microscopy are suitable tools to study the interactions of various lipases with model membranes. The objective of our study was to characterize the adsorption and lipolysis behavior of different gastrointestinal enzymes onto biomimetic vegetal membranes. An heterogenous monolayer based on a mixture of unsaturated galactolipids (MGDG, DGDG), saturated phospholipids (DPPC), and phytosterols was used. Four enzymes were studied, (i) gastric lipase (GL), which has no lipolytic activity on polar lipids but whose adsorption may modulate the subsequent adsorption and activity of other lipases, and three pancreatic enzymes: (ii) pancreatic lipase 2 (PLRP2) presenting both galactolipase and phospholipase A1 activities, (iii) pancreatic triacylglycerol lipase and its cofactor, colipase (PTL/coPTL), and (iv) pancreatic secreted phospholipase A2 (sPLA2-IB). A strong surfactant property of GL and its preferential adsorption at both the expanded lipid phase and at the boundary phase were observed, in line with previous results obtained with biomimetic milk fat globule mem- brane. With PLRP2, changes in surface pressure indicated a lipolytic activity in addition to lipase adsorption, with a higher rate at surface pressure below 15 mN/m. A drastic decrease in film thickness was also observed by ellipsometry, suggesting the removal of some lipolysis products. Such variation was not observed upon PTL/coPTL adsorption and may be related to the absence of activity of PTL on polar lipids. Finally, the evolution of adsorption kinetic after injection of sPLA2-IB did not indicate a clear trend of lipolysis on the lipid film. However, a change in the morphology of condensed domains was observed by AFM, suggesting a phase separation of lipids induced by binding of sPLA2-IB. This study is a step forward in the understanding of interaction of gastrointestinal lipases with plant lipid membranes, an overlooked aspect of lipid digestion. (Texte intégral)

Published
2022

15. Comportement oxydatif et interfacial d'oléosomes de noix

Author

Kergomard, Jeanne, Vié, V., Paboeuf, G., Barouh, Nathalie, Barea, Bruno, Villeneuve, Pierre, Schafer, Olivier, Wooster, Tim, Bourlieu-Lacanal, Claire, Institut de Physique de Rennes (IPR), Université de Rennes 1 (UR1), Université de Rennes (UNIV-RENNES)-Université de Rennes (UNIV-RENNES)-Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS), Ingénierie des Agro-polymères et Technologies Émergentes (UMR IATE), Centre de Coopération Internationale en Recherche Agronomique pour le Développement (Cirad)-Institut National de la Recherche Agronomique (INRA)-Université Montpellier 2 - Sciences et Techniques (UM2)-Centre international d'études supérieures en sciences agronomiques (Montpellier SupAgro)-Université de Montpellier (UM)-Institut national d’études supérieures agronomiques de Montpellier (Montpellier SupAgro), Institut national d'enseignement supérieur pour l'agriculture, l'alimentation et l'environnement (Institut Agro)-Institut national d'enseignement supérieur pour l'agriculture, l'alimentation et l'environnement (Institut Agro), Nestle Reasearch Center, Institut national d’études supérieures agronomiques de Montpellier (Montpellier SupAgro)-Centre de Coopération Internationale en Recherche Agronomique pour le Développement (Cirad)-Centre international d'études supérieures en sciences agronomiques (Montpellier SupAgro)-Université Montpellier 2 - Sciences et Techniques (UM2)-Université de Montpellier (UM)-Institut National de la Recherche Agronomique (INRA), Université de Rennes (UR)-Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS), Nestlé Research Center | Centre de recherche Nestlé [Lausanne], and Nestlé S.A.

Subjects
[PHYS.PHYS]Physics [physics]/Physics [physics], [SDV.BV]Life Sciences [q-bio]/Vegetal Biology, [SDV.BBM]Life Sciences [q-bio]/Biochemistry, Molecular Biology, [SDV.AEN]Life Sciences [q-bio]/Food and Nutrition, ComputingMilieux_MISCELLANEOUS
Abstract

International audience

Published
2019

16. Activité enzymatique sur les lipides végétaux : combinaison de mesures interfaciales à l'échelle moléculaire (nm) et de mesures cinétiques de dégradation à l'échelle de l'objet (μm) [Defense 13.10.2022]

Author

Kergomard, Jeanne, Institut de Physique de Rennes (IPR), Université de Rennes (UR)-Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS), Viel, Alexandra, Université de Rennes 1 (UR1), and Université de Rennes (UNIV-RENNES)-Université de Rennes (UNIV-RENNES)-Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS)

Subjects
[PHYS]Physics [physics], PhDtitle, Soutenance2022, [PHYS] Physics [physics]
Abstract

supervisors Véronique Vié (department of soft matter) and Claire Bourlieu, sous la direction de Véronique Vié dans le département matière molle et de Claire Bourlieu

Published
2019

17. Oxidative and interfacial behavior of native oil bodies from walnut

Author

Kergomard, Jeanne, Vié, Véronique, Paboeuf, Gilles, Barouh, Nathalie, Baréa, Bruno, Villeneuve, Pierre, Schafer, Olivier, Wooster, Tim J., Bourlieu, Claire, Kergomard, Jeanne, Vié, Véronique, Paboeuf, Gilles, Barouh, Nathalie, Baréa, Bruno, Villeneuve, Pierre, Schafer, Olivier, Wooster, Tim J., and Bourlieu, Claire

Published
2019

18. Interfacial adsorption of gastrointestinal lipases onto heterogenous biomimetic vegetal membranes

Author

Jeanne Kergomard, Frédéric Carrière, Gérard Lambeau, Gilles Paboeuf, Nathalie Barouh, Pierre Villeneuve, Claire Bourlieu, Véronique Vié, Institut de Physique de Rennes (IPR), Université de Rennes (UR)-Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS), Bioénergétique et Ingénierie des Protéines (BIP ), Aix Marseille Université (AMU)-Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS), Institut de pharmacologie moléculaire et cellulaire (IPMC), Université Nice Sophia Antipolis (1965 - 2019) (UNS), COMUE Université Côte d'Azur (2015-2019) (COMUE UCA)-COMUE Université Côte d'Azur (2015-2019) (COMUE UCA)-Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS)-Université Côte d'Azur (UCA), Démarche intégrée pour l'obtention d'aliments de qualité (UMR QualiSud), Centre de Coopération Internationale en Recherche Agronomique pour le Développement (Cirad)-Institut de Recherche pour le Développement (IRD)-Avignon Université (AU)-Université de La Réunion (UR)-Institut Agro Montpellier, Institut national d'enseignement supérieur pour l'agriculture, l'alimentation et l'environnement (Institut Agro)-Institut national d'enseignement supérieur pour l'agriculture, l'alimentation et l'environnement (Institut Agro)-Université de Montpellier (UM), Ingénierie des Agro-polymères et Technologies Émergentes (UMR IATE), Institut National de Recherche pour l’Agriculture, l’Alimentation et l’Environnement (INRAE)-Institut Agro Montpellier, and Kergomard, Jeanne

Subjects
[PHYS]Physics [physics], interfacial adsorption, [CHIM.ANAL] Chemical Sciences/Analytical chemistry, biomimetic vegetal lipid membrane, pancreatic sPLA2, lipolysis, [PHYS] Physics [physics], [SDV.AEN] Life Sciences [q-bio]/Food and Nutrition, gastric lipase, [CHIM.ANAL]Chemical Sciences/Analytical chemistry, pancreatic lipase, [PHYS.COND]Physics [physics]/Condensed Matter [cond-mat], [SDV.AEN]Life Sciences [q-bio]/Food and Nutrition, [PHYS.COND] Physics [physics]/Condensed Matter [cond-mat]
Abstract

International audience; Langmuir films and their analysis by tensiometry, ellipsometry and Langmuir-Blodgett transfer coupled to atomic force microscopy are suitable tools to study the interactions of various lipases with model membranes. The objective of our study was to characterize the adsorption and lipolysis behavior of different gastrointestinal enzymes onto biomimetic vegetal membranes. An heterogenous monolayer based on a mixture of unsaturated galactolipids (MGDG, DGDG), saturated phospholipids (DPPC), and phytosterols was used. Four enzymes were studied, i) gastric lipase (GL), which has no lipolytic activity on polar lipids but whose adsorption may modulate the subsequent adsorption and activity of other lipases, and three pancreatic enzymes: ii) pancreatic lipase 2 (PLRP2) presenting both galactolipase and phospholipase A1 activities, (iii) pancreatic triacylglycerol lipase and its cofactor, colipase (PTL/coPTL), and (iv) pancreatic secreted phospholipase A2 (sPLA2-IB). A strong surfactant property of GL and its preferential adsorption at both the expanded lipid phase and at the boundary phase were observed, in line with previous results obtained with biomimetic milk fat globule membrane. With PLRP2, changes in surface pressure indicated a lipolytic activity in addition to lipase adsorption, with a higher rate at surface pressure below 15 mN/m. A drastic decrease in film thickness was also observed by ellipsometry, suggesting the removal of some lipolysis products. Such variation was not observed upon PTL/coPTL adsorption, and may be related to the absence of activity of PTL on polar lipids. Finally, the evolution of adsorption kinetic after injection of sPLA2-IB did not indicate a clear trend of lipolysis on the lipid film. However, a change in the morphology of condensed domains was observed by AFM, suggesting a phase separation of lipids induced by binding of sPLA2-IB.This study is a step forward in the understanding of interaction of gastrointestinal lipases with plant lipid membranes, an overlooked aspect of lipid digestion.

Published
2022

19. Modulation of gastric lipase adsorption onto mixed galactolipid-DPPC films by the addition of phytosterols

Author

Jeanne Kergomard, Frédéric Carrière, Paboeuf, G., Franck Artzner, Nathalie Barouh, Pierre Villeneuve, Claire Bourlieu, Vié, V., Institut de Physique de Rennes (IPR), Université de Rennes 1 (UR1), Université de Rennes (UNIV-RENNES)-Université de Rennes (UNIV-RENNES)-Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS), Ingénierie des Agro-polymères et Technologies Émergentes (UMR IATE), Centre de Coopération Internationale en Recherche Agronomique pour le Développement (Cirad)-Centre international d'études supérieures en sciences agronomiques (Montpellier SupAgro)-Université de Montpellier (UM)-Institut national d’études supérieures agronomiques de Montpellier (Montpellier SupAgro), Institut national d'enseignement supérieur pour l'agriculture, l'alimentation et l'environnement (Institut Agro)-Institut national d'enseignement supérieur pour l'agriculture, l'alimentation et l'environnement (Institut Agro)-Institut National de Recherche pour l’Agriculture, l’Alimentation et l’Environnement (INRAE), Bioénergétique et Ingénierie des Protéines (BIP ), Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS)-Aix Marseille Université (AMU), Démarche intégrée pour l'obtention d'aliments de qualité (UMR QualiSud), Centre de Coopération Internationale en Recherche Agronomique pour le Développement (Cirad)-Institut de Recherche pour le Développement (IRD)-Avignon Université (AU)-Université de La Réunion (UR)-Université de Montpellier (UM)-Institut national d’études supérieures agronomiques de Montpellier (Montpellier SupAgro), Institut national d'enseignement supérieur pour l'agriculture, l'alimentation et l'environnement (Institut Agro)-Institut national d'enseignement supérieur pour l'agriculture, l'alimentation et l'environnement (Institut Agro), Département Performances des systèmes de production et de transformation tropicaux (Cirad-PERSYST), Centre de Coopération Internationale en Recherche Agronomique pour le Développement (Cirad), Kergomard, Jeanne, Université de Rennes (UR)-Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS), Centre de Coopération Internationale en Recherche Agronomique pour le Développement (Cirad)-Université de Montpellier (UM)-Institut National de Recherche pour l’Agriculture, l’Alimentation et l’Environnement (INRAE)-Institut Agro - Montpellier SupAgro, Aix Marseille Université (AMU)-Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS), and Centre de Coopération Internationale en Recherche Agronomique pour le Développement (Cirad)-Institut de Recherche pour le Développement (IRD)-Avignon Université (AU)-Université de La Réunion (UR)-Université de Montpellier (UM)-Institut Agro - Montpellier SupAgro

Subjects
[PHYS]Physics [physics], [SDV.AEN] Life Sciences [q-bio]/Food and Nutrition, [SDV.BBM] Life Sciences [q-bio]/Biochemistry, Molecular Biology, [SDV.BBM]Life Sciences [q-bio]/Biochemistry, Molecular Biology, [PHYS.COND]Physics [physics]/Condensed Matter [cond-mat], [SDV.AEN]Life Sciences [q-bio]/Food and Nutrition, [PHYS.COND] Physics [physics]/Condensed Matter [cond-mat], ComputingMilieux_MISCELLANEOUS, [PHYS] Physics [physics]
Abstract

International audience

Published
2021

20. Modulation of gastric lipase adsorption into mixed galactolipid-DPPC films by the addition of phytosterols

Author

Jeanne Kergomard, Frédéric Carrière, Gilles Paboeuf, Franck Artzner, Nathalie Barouh, Pierre Villeneuve, Claire Bourlieu, Véronique Vié, Institut de Physique de Rennes (IPR), Université de Rennes 1 (UR1), Université de Rennes (UNIV-RENNES)-Université de Rennes (UNIV-RENNES)-Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS), Ingénierie des Agro-polymères et Technologies Émergentes (UMR IATE), Centre de Coopération Internationale en Recherche Agronomique pour le Développement (Cirad)-Centre international d'études supérieures en sciences agronomiques (Montpellier SupAgro)-Université de Montpellier (UM)-Institut national d’études supérieures agronomiques de Montpellier (Montpellier SupAgro), Institut national d'enseignement supérieur pour l'agriculture, l'alimentation et l'environnement (Institut Agro)-Institut national d'enseignement supérieur pour l'agriculture, l'alimentation et l'environnement (Institut Agro)-Institut National de Recherche pour l’Agriculture, l’Alimentation et l’Environnement (INRAE), Bioénergétique et Ingénierie des Protéines (BIP ), Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS)-Aix Marseille Université (AMU), Démarche intégrée pour l'obtention d'aliments de qualité (UMR QualiSud), Centre de Coopération Internationale en Recherche Agronomique pour le Développement (Cirad)-Institut de Recherche pour le Développement (IRD)-Avignon Université (AU)-Université de La Réunion (UR)-Université de Montpellier (UM)-Institut national d’études supérieures agronomiques de Montpellier (Montpellier SupAgro), Institut national d'enseignement supérieur pour l'agriculture, l'alimentation et l'environnement (Institut Agro)-Institut national d'enseignement supérieur pour l'agriculture, l'alimentation et l'environnement (Institut Agro), Université de Rennes (UR)-Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS), Centre de Coopération Internationale en Recherche Agronomique pour le Développement (Cirad)-Université de Montpellier (UM)-Institut National de Recherche pour l’Agriculture, l’Alimentation et l’Environnement (INRAE)-Institut Agro - Montpellier SupAgro, Aix Marseille Université (AMU)-Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS), Centre de Coopération Internationale en Recherche Agronomique pour le Développement (Cirad)-Institut de Recherche pour le Développement (IRD)-Avignon Université (AU)-Université de La Réunion (UR)-Université de Montpellier (UM)-Institut Agro - Montpellier SupAgro, and Kergomard, Jeanne

Subjects
[PHYS]Physics [physics], [SDV.AEN] Life Sciences [q-bio]/Food and Nutrition, [PHYS.COND]Physics [physics]/Condensed Matter [cond-mat], [SDV.AEN]Life Sciences [q-bio]/Food and Nutrition, [PHYS.COND] Physics [physics]/Condensed Matter [cond-mat], ComputingMilieux_MISCELLANEOUS, [PHYS] Physics [physics]
Abstract

National audience

Published
2021

21. Stability to oxidation and interfacial behavior at the air/water interface of minimally-processed versus processed walnut oil-bodies

Author

Nathalie Barouh, Jeanne Kergomard, Tim J. Wooster, Claire Bourlieu, Véronique Vié, Olivier Schafer, Pierre Villeneuve, Gilles Paboeuf, Institut de Physique de Rennes (IPR), Université de Rennes 1 (UR1), Université de Rennes (UNIV-RENNES)-Université de Rennes (UNIV-RENNES)-Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS), Ingénierie des Agro-polymères et Technologies Émergentes (UMR IATE), Centre de Coopération Internationale en Recherche Agronomique pour le Développement (Cirad)-Centre international d'études supérieures en sciences agronomiques (Montpellier SupAgro)-Université de Montpellier (UM)-Institut national d’études supérieures agronomiques de Montpellier (Montpellier SupAgro), Institut national d'enseignement supérieur pour l'agriculture, l'alimentation et l'environnement (Institut Agro)-Institut national d'enseignement supérieur pour l'agriculture, l'alimentation et l'environnement (Institut Agro)-Institut National de Recherche pour l’Agriculture, l’Alimentation et l’Environnement (INRAE), Démarche intégrée pour l'obtention d'aliments de qualité (UMR QualiSud), Centre de Coopération Internationale en Recherche Agronomique pour le Développement (Cirad)-Institut de Recherche pour le Développement (IRD)-Avignon Université (AU)-Université de La Réunion (UR)-Université de Montpellier (UM)-Institut national d’études supérieures agronomiques de Montpellier (Montpellier SupAgro), Institut national d'enseignement supérieur pour l'agriculture, l'alimentation et l'environnement (Institut Agro)-Institut national d'enseignement supérieur pour l'agriculture, l'alimentation et l'environnement (Institut Agro), Synthèse Caractérisation Analyse de la Matière (ScanMAT), Université de Rennes (UNIV-RENNES)-Université de Rennes (UNIV-RENNES)-Institut de Chimie du CNRS (INC)-Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS), Nestlé Institute of Health Sciences SA [Lausanne, Switzerland], The authors acknowledge Carine Alcon and the imaging facility MRI (‘Montpellier Ressources Imagerie’, Montpellier, France), member of the national infrastructure France-BioImaging infrastructure supported by the French National Research Agency (ANR-10-INBS-04, «Investments for the future»)., ANR-10-INBS-0004,France-BioImaging,Développment d'une infrastructure française distribuée coordonnée(2010), Université de Rennes (UR)-Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS), Centre de Coopération Internationale en Recherche Agronomique pour le Développement (Cirad)-Université de Montpellier (UM)-Institut National de Recherche pour l’Agriculture, l’Alimentation et l’Environnement (INRAE)-Institut Agro - Montpellier SupAgro, Centre de Coopération Internationale en Recherche Agronomique pour le Développement (Cirad)-Institut de Recherche pour le Développement (IRD)-Avignon Université (AU)-Université de La Réunion (UR)-Université de Montpellier (UM)-Institut Agro - Montpellier SupAgro, Département Performances des systèmes de production et de transformation tropicaux (Cirad-PERSYST), Centre de Coopération Internationale en Recherche Agronomique pour le Développement (Cirad), Kergomard, Jeanne, and Université de Rennes (UR)-Institut de Chimie du CNRS (INC)-Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS)

Subjects
Air water interface, 01 natural sciences, Analytical Chemistry, [PHYS] Physics [physics], chemistry.chemical_compound, Walnut beverage emulsion, Traitement des aliments, Nuts, Food science, ComputingMilieux_MISCELLANEOUS, Minimalist processes, chemistry.chemical_classification, [PHYS]Physics [physics], Ellipsometry, Acide gras polyinsaturé, 04 agricultural and veterinary sciences, General Medicine, 040401 food science, Triacylglycerol storage, Émulsifiant, Oil bodies, Emulsion, Emulsions, Oxidation-Reduction, [PHYS.COND] Physics [physics]/Condensed Matter [cond-mat], Polyunsaturated fatty acid, [PHYS.PHYS.PHYS-BIO-PH]Physics [physics]/Physics [physics]/Biological Physics [physics.bio-ph], Juglans, Stabilité oxydative, 0404 agricultural biotechnology, Adsorption, Q02 - Traitement et conservation des produits alimentaires, Triglycéride, TBARS, Plant Oils, [SDV.BBM]Life Sciences [q-bio]/Biochemistry, Molecular Biology, Oxydation, [PHYS.COND]Physics [physics]/Condensed Matter [cond-mat], Q04 - Composition des produits alimentaires, Oxidative stability, Triglyceride, 010401 analytical chemistry, Water, Lipid Droplets, Walnut oil, Corps gras, 0104 chemical sciences, [SDV.AEN] Life Sciences [q-bio]/Food and Nutrition, chemistry, [SDV.AEN]Life Sciences [q-bio]/Food and Nutrition, Food Science
Abstract

International audience; Oil bodies (OB), the form of triacylglycerol storage in seeds, are interesting natural assemblies for nutritional applications. In walnuts, OB contain an important amount of polyunsaturated fatty acids that could be interesting food ingredients but may be prone to oxidation. The oxidative and interfacial behavior of walnut OB, either minimally-processed or after processing, were compared with processed complex walnut juice. The good oxidative stability of minimally-processed OB over 10 days (PV ≤ 8.4 meq O2/kg, TBARS = 1.4 mmol eq MDA/kg) and of processed walnut complex matrixes over 20 days (PV ≤ 4.8 meq O2/kg, TBARS = 1.4 mmol eq MDA/kg) was evidenced. In comparison, processing of OB promoted their oxidation. The interfacial studies led to the proposition of a new model of adsorption for minimally-processed OB that will be useful to design functional emulsion or foam in which OB act as emulsifiers.

Published
2021
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